Без кейворда

Amyloodinium ocellatum, более известный как морской бархат, является одним из наиболее часто встречающихся патогенов, поражающих тропических морских декоративных рыб (Joshi, 2003, Michael, 2002 и Fenner), а также представляет собой большую проблему для пищевой рыбной промышленности (Cobb, Levy, & Noga, 1998, Montgomery-Brock et al, 2001, Noga & Levy, 1995, CTSA, Univ. of Florida и Schwarz & Smith). В связи с этим было проведено большое количество исследований по контролю и искоренению этого вида. Поскольку эти научные исследования включают изучение методов лечения болезни, это настоящая находка для тех из нас, кто интересуется морскими декоративными растениями.

Amyloodinium ocellatum – это динофлагеллят. Считайте, что это тип одноклеточной паразитической водоросли с двумя жгутиками, которыми она машет, чтобы передвигаться, с характеристиками как растений, так и животных. Его таксономическое обозначение несколько сложно; ботаники предпочитают называть его водорослью, а в прошлом зоологи утверждали, что это простейшее. Сейчас амилодинии классифицируются как динофлагелляты в царстве Protista, которое находится как бы между растениями и животными, являясь фотосинтезирующими и подвижными. В любом случае, несмотря на то, что Amyloodinium ocellatum больше не относят к простейшим, он имеет сложный жизненный цикл, сходный с Cryptocaryon irritans (соленоводный ях), Icthyopthirius multifilis (пресноводный ях) и видами рода Piscinoodinium (пресноводный бархат).

Кормовая стадия этого паразита называется трофонт. Его можно обнаружить прикрепленным к зараженной рыбе с помощью ризоидов, которые представляют собой корнеподобные структуры, используемые паразитами для проникновения, удержания и питания от хозяина. Когда трофонт созревает и вырастает до среднего диаметра примерно 80-100 мкм (Schwarz & Smith) и максимального размера 350 мкм (Noga & Levy, 1995) (для сравнения, трофонты Cryptocaryon irritans были измерены до 452 мкл (Colorni & Burgess, 1997)), он отпадает от рыбы-хозяина, энцистируется и образует стадию, называемую томонтом. Затем начинается процесс репродуктивного деления. Один томонт делится многократно, пока не появится до 256 ожидающих потомства особей. Этот процесс может завершиться довольно быстро, всего за три-пять дней при температуре воды 72-77ºF. После прекращения деления циста вылупляется и выпускает крошечные роящиеся диноспоры, диаметр которых достигает 12-15 мкл. В отличие от Cryptocaryon irritans, свободно плавающие теронты которого жизнеспособны всего день или два, эти диноспоры остаются инфекционными в течение как минимум шести, а возможно, и пятнадцати дней.

Иногда в отчетах описывается обнаружение томонтов Amyloodinium ocellatum в желудке, кишечнике или пищеводе рыбы. Хочу уточнить, что это не означает, что морской бархат находится в спящей фазе или что он может избежать лечения, спрятавшись в теле своего хозяина. Скорее, считается, что эти томонты развиваются в другом месте и впоследствии просто потребляются рыбой (Noga & Levy, 1995).

В связи с жизненным циклом этих рыб, общей рекомендацией является карантин новых приобретений в течение 20 дней, чтобы избежать занесения болезни (Noga, 2000 и Trevor-Jones, 2004), но я бы настоятельно рекомендовал большинству любителей изолировать их на целый месяц, оптимально – на шесть недель, по ряду причин. Первая причина – это однородность. Поскольку потребуется не менее месяца, чтобы узнать, свободно ли ваше новое приобретение от Cryptocaryon irritans, лучше просто привыкнуть к длительному периоду карантина. Во-вторых, признаки этой инфекции не очевидны, и, на мой взгляд, большинство аквариумистов могут легко их пропустить. Полный месяц или больше карантина должен дать вам достаточно времени, чтобы заметить заражение, или, если вы не заметите признаки, рыба, скорее всего, погибнет к концу карантинного периода.

Признаки инфекции Marine Velvet довольно малозаметны. Одним из наиболее распространенных признаков является затрудненное дыхание. Другими признаками являются снижение или полная потеря аппетита, трение о предметы в аквариуме, неустойчивое поведение при плавании, а также пыльный или тусклый бархатистый блеск, от которого эта болезнь получила свое общее название. Amyloodinium предпочитает в первую очередь поражать жаберную ткань рыб (Noga & Levy, 1995 и Stoskopf, 1993), поэтому, как только болезнь перейдет на тело, я буду считать, что рыба сильно заражена и, возможно, надежды на выздоровление уже нет.

Уже написав серию из двух частей о лечении Cryptocaryon irritans (морской ич) и понимая, что у него много общих методов лечения с Amyloodinium ocellatum (морской бархат), я не буду тратить время на повторение того, что уже обсуждалось. Вместо этого я прошу вас ознакомиться с моими предыдущими статьями о вариантах лечения морского лишая/ Cryptocaryon irritans, расположенными здесь и здесь. Это позволит мне углубиться в некоторые из наиболее интересных методов лечения Amyloodinium ocellatum.

Вариант лечения 1: Естественный иммунитет

Как и в случае с Cryptocaryon irritans, было продемонстрировано, что рыбы могут выработать иммунитет к Amyloodinium ocellatum после нескольких несмертельных воздействий, и что этот иммунитет может сохраняться в течение как минимум шести месяцев (Cobb, Levy, & Noga, 1998). В одном из тестов томатные рыбы-клоуны (Amphiprion frenatus) раз в неделю подвергались в контейнерах воздействию 40 000 диноспор на рыбу в течение тридцати минут. После этого их переселили в отдельные аквариумы на три дня. После этого каждую рыбу окунали в пресную воду на три минуты, а затем пересаживали в разные аквариумы для восстановления. В каждом восстановительном аквариуме концентрация меди поддерживалась на уровне 0,15-0,20 мг/л, чтобы вылечить инвазию. Рыба оставалась там в течение недели, чтобы дать ей время восстановиться. После этого процесс был повторен еще раз с последующим воздействием и лечением.

Через четырнадцать дней у значительного числа рыб в эксперименте проявился иммунный ответ, а через двадцать восемь дней все рыбы в исследовании, кроме одной, были полностью свободны от тро-фонтов. Самое интересное, что я обнаружил, это способ защиты. Иммунные рыбы оставались восприимчивыми к диноспорам, но по непонятным причинам трофонты не росли и преждевременно отпадали от своих хозяев. Была выдвинута теория, что иммунный ответ рыб включает в себя “антитрофонный механизм”, с помощью которого рыба-хозяин, приобретшая иммунитет, может “отторгать трофонтов или, по крайней мере, сильно тормозить развитие трофонтов”. Затем авторы предложили в качестве способа защиты объектов аквакультуры намеренно добавлять иммунных рыб, чтобы замедлить заражение ранее не подвергавшихся заражению рыб. Поскольку обе рыбы будут восприимчивы к заражению, иммунных рыб можно использовать как своего рода приманку, чтобы снизить общее количество диноспор в окружающей среде. Это позволило бы подвергнуть неиммунных рыб не смертельному испытанию диноспорами и дать им больше времени для развития устойчивости к паразиту.

Последнее интересное наблюдение, вытекающее из данного исследования, касается специфичности иммунитета. Хотя авторы специально не проводили экспериментов, чтобы проверить, будет ли этот иммунный ответ работать только против Amyloodinium ocellatum, у них произошла неожиданная вспышка Cryptocaryon irritans, которая убила как необлученных, так и устойчивых рыб. Это говорит о том, что любой приобретенный иммунитет специфичен для конкретного паразита. Это должно стать тревожным сигналом для тех из вас, кто до сих пор не пришел к выводу о необходимости карантина и профилактического лечения. Лучше перестраховаться, чем потом жалеть, и даже профессионалы с многолетней подготовкой в области патологии рыб иногда допускают ошибки при отборе якобы здоровых рыб. Карантин, карантин, карантин!

Хотя может показаться, что естественный иммунитет является решением проблемы этой болезни, я бы не стал полагаться на него. Много раз я читал на различных досках объявлений, что проблемы с болезнями связаны со стрессом, и поэтому, если мы избавимся от стрессовых факторов, собственная иммунная система рыб позаботится об инфекции. Напутствие звучит примерно так: “Кормите отличным кормом и поддерживайте оптимальное качество воды, и ваши проблемы уйдут”. К сожалению, мой опыт показывает, что если не принять быструю, проактивную позицию в отношении лечения, то это обычно приводит к гибели ваших рыб. По моему опыту, Amyloodinium ocellatum всегда был быстродействующим и смертельным без раннего обнаружения и лечения. Ждать, пока сработает естественный иммунитет, на мой взгляд, бесполезно. Помните, что в ходе испытаний рыбы неоднократно подвергались заражению, а затем излечивались с помощью погружения в пресную воду и меди. И только после многократного воздействия и последующего лечения иммунитет, наконец, обеспечил испытуемым полную защиту. Кроме того, мы говорим о паразитах. Любой стресс в мире не может заставить паразита появиться из воздуха. Это все равно, что сказать, что если в вашей жизни будет стресс, то у вас спонтанно появятся ленточные черви. Это не имеет смысла, как и аналогичный аргумент в отношении рыб и их паразитов.

Вариант лечения 2: Медь

Медь широко доступна, недорога и доказала свою эффективность. Эти качества сделали ее наиболее часто используемым химическим средством для лечения этого паразита в США (Noga, 2000, Trevor-Jones, 2004 и Университет Флориды). Но при всех своих положительных качествах медь может быть проблематичной. Она имеет узкий диапазон эффективности: слишком высокая концентрация может быть смертельной для рыбы, слишком низкая – бесполезной. Она требует ежедневного, а в некоторых случаях и дважды в день, тестирования и корректировки концентрации для поддержания необходимого количества, что делает ее применение трудоемким занятием. Тем не менее, он дешев, работает, и его можно найти практически в любом рыбном магазине, поэтому, скорее всего, это средство будет использоваться еще некоторое время.

Вариант лечения 3: Хлорохин дифосфат

Хлорохин дифосфат является безопасным и доказанно эффективным средством для лечения Amyloodinium ocellatum. Однократная доза 5-10 мг/л очищает рыбу от заражения за десять дней (Noga & Levy, 1995). Звучит здорово, но и у этого препарата есть свои недостатки. Во-первых, его трудно найти. Я знаю только одну компанию, которая продает этот препарат для аквариумной индустрии, – Marex компании Aquatronic. И хотя сообщается, что он безопасен для рыб, он “очень токсичен для микро- и макроводорослей и различных беспозвоночных” (Noga & Levy, 1995). Таким образом, это еще одно эффективное средство, которое, как и медь, нельзя применять в выставочном аквариуме.

Я уже говорил о важности наличия и использования соответствующего карантинного аквариума? Приобретите его и используйте. Бедные ATJ, SAT, oama и другие активные участники форума “Болезни рыб” на Reef Central, должно быть, сходят с ума, отвечая на ежедневный натиск тем. Я знаю, что редко читаю темы там, потому что это так разочаровывает и удручает. Обычно они звучат примерно так: “Я сделал именно то, что все авторитеты в этом хобби говорят не делать. Я бросил эту совершенно новую рыбу в свой аквариум без карантинного периода. Но он показался мне нормальным, а я держу морских рыб уже целых шесть месяцев. Кроме того, продавец, который продал мне эту рыбу, заверил меня, что она здорова, и он не стал бы вводить меня в заблуждение только для того, чтобы заработать и избавиться от больной рыбы. Теперь все мои рыбки болеют и умирают. У меня нет карантинного аквариума, и даже если бы он был, я не смог бы выловить и вывезти всех моих рыб для лечения, не разнеся весь аквариум. Что мне теперь делать? Пожалуйста, помогите мне! Я не хочу потерять всех своих рыбок!”. Если бы карантинные аквариумы были стандартом в этом хобби, у нас не было бы такого количества потерь поголовья, а впоследствии люди ежегодно отказывались бы от содержания аквариумов.

Вариант лечения 4: погружение в пресную воду

Было доказано, что погружение в пресную воду в течение пяти минут заставляет вытеснить большинство, хотя и не все, трофонты на зараженной рыбе (Noga, 2000 и Noga & Levy, 1995). Проблема с погружением в пресную воду заключается в том, что оно ничего не делает с энцистированными трофонтами и роящимися диноспорами, уже существующими в зараженном аквариуме. Даже если вам повезло, и ваше одно пресноводное погружение было на 100% эффективным, эта рыба снова заразится при повторном помещении в зараженный аквариум.

Даже если они не совсем эффективны, погружения в пресную воду все равно могут быть полезны. Во-первых, их можно использовать для немедленного успокоения зараженной рыбы, уничтожив часть ее паразитов, прежде чем использовать другой способ лечения для полного излечения. Кроме того, погружение в пресную воду может быть эффективным инструментом для правильной диагностики заражения Amyloodinium ocellatum. Подробный протокол для правильной идентификации морского бархата с помощью пресноводных погружений можно найти здесь. Также можно использовать пресноводное погружение как самостоятельное лекарство (Montgomery-Brock et al, 2001). Просто окуните зараженную рыбу в пресную воду на пять минут, а затем пересадите ее в новый, чистый аквариум. Повторяйте эту процедуру каждые три дня, всего три раза. В конце этого курса лечения рыба должна быть чиста и свободна от паразитов. Должен сказать, что мне не хотелось бы даже упоминать об этом протоколе. Хотя он может сработать, по моему мнению, он будет чрезвычайно стрессовым для рыб. В этом случае я бы сказал, что лечение почти так же плохо, как и болезнь. Однако это не означает, что я считаю, что погружение в пресную воду – это слишком сильный стресс. Я использую и рекомендую пресноводные погружения в качестве диагностического инструмента, как упоминалось выше, и для оказания немедленной помощи зараженным рыбам. Я просто предпочитаю не использовать их многократно, чтобы добиться излечения.

Вариант лечения 5: Формалин

Формалин, раствор газообразного формальдегида в воде, является спорным методом лечения Amyloodinium ocellatum. Некоторые исследования показали, что формалин заставляет вытеснять трофонтов из подопытных рыб, что позволяет перенести их в чистый аквариум, свободный от заражения (Paperna, 1980 и Paperna, 1984). Это аналогично использованию погружения в пресную воду и переноса в аквариум в описанном выше варианте лечения. Формалин в концентрации 150 или 200 ppm приводит к полному вытеснению особей за шесть часов. Он также сработает при 100 ppm при девятичасовом воздействии. Но если рыбу искупать в формалине, а затем вернуть в тот же зараженный аквариум, она легко заразится повторно.

Если выбирать между этими двумя вариантами, я бы предпочел пресноводные погружения. Во-первых, вам не придется бежать в местный рыбный магазин за формалином. Для погружения в пресную воду достаточно дехлорированной воды и буфера – предметов, которые должны быть под рукой у любого аквариумиста. Кроме того, формалин – довольно неприятное соединение. В лабораторных экспериментах на крысах было доказано, что он вызывает рак, а у людей может вызвать поражение легких (Noga, 2000). Именно поэтому обычно рекомендуется использовать формалин только в хорошо проветриваемых помещениях.

Формалин имеет довольно странный диапазон эффективности в отношении различных стадий жизненного цикла Amyloodinium ocellatum. Он может заставить трофонтов отбросить своих хозяев, но не останавливает их формирование. В концентрации 200 ppm он может временно подавить деление и образование диноспор, но размножение начнется снова, если удалить формалин. Таким образом, он не так полезен против энцистированных томонтов, но эффективен против диноспор после их вылупления (Noga, 2000). В качестве альтернативы методу купания и переноса можно поддерживать экспозицию формалина до тех пор, пока все трофонты и томонты не сформируют диноспоры, но это потребует еще большего воздействия этого препарата на зараженных рыб и аквариумиста.

Вариант лечения 6: Гипосолинизация

Хотя гипосаливация часто рекомендуется для лечения морского иха/ Cryptocaryon irritans, против морского бархата/ Amyloodinium ocellatum она вряд ли будет полезной. Amyloodinium ocellatum может выживать в гораздо более широком диапазоне сред, чем Cryptocaryon irritans. Для уничтожения Cryptocaryon irritans обычно рекомендуется соленость 16 ppt в течение 28 дней (Noga, 2000), но Amyloodinium ocellatum был обнаружен при солености от 3 до 45 ppt (Noga, 2000), при этом оптимальный диапазон солености для размножения составляет от 16,7 до 28,5 ppt (Университет Флориды). Очевидно, что снижение солености не будет эффективным.

Прежде чем продолжить, я хочу оставить читателю одно короткое замечание об использовании гипосолености для борьбы с Cryptocaryon irritans. Гипосоленость была чрезвычайно эффективна против Cryptocaryon irritans и, вероятно, будет оставаться таковой еще некоторое время. Но недавние исследования показали, что диапазон солености этого паразита расширился. Я бы посоветовал прочитать статью Терри Бартелма здесь о приспособляемости паразита Cryptocaryon irritans в определенных местах.

Вариант лечения 7: комбинированная терапия акрифлавином, аминоакридином и формалином

Это один из самых последних препаратов, появившихся на рынке. Его слава заключается в том, что он якобы является безопасной для рифов альтернативой. На самом деле, на этикетке с обратной стороны бутылки используется термин “безопасный для рифов”, а затем говорится: “Безопасен для всех рыб (включая бесчешуйчатых), растений, кораллов и беспозвоночных. Не влияет на биофильтрацию”. Активные ингредиенты перечислены как акрифлавин, аминоакридин и формалин. Давайте обсудим их по порядку.

Акрифлавин действительно работает против некоторых бактериальных, грибковых и паразитарных инфекций (Noga, 2000). Я даже нашел упоминание о том, что акрифлавин в концентрации 6 ppm действует против размножения у томонтов (Paperna, 1984). Это плюс. Минусом является то, что он, как сообщается, не так эффективен, как другие средства против любого вида инфекции, будь то бактериальная, грибковая или паразитарная (Noga, 2000). Он также обесцвечивает воду, что особенно проблематично в рифовом аквариуме с фотосинтезирующими организмами, нуждающимися в свете для получения энергии, и может быть токсичен для некоторых рыб (Gratzek et al, 1992). Его потенциальная токсичность для некоторых рыб не сулит ничего хорошего для его использования в сложной экосистеме, такой как зрелый рифовый аквариум. Наряду с этим, его широкий спектр действия (т.е. он может убивать некоторые бактерии, грибки и паразитов) вызывает у меня опасения по поводу его использования в рифовом аквариуме.

Мне не удалось найти много информации о лечении болезней рыб с помощью аминоакридина. Он был одним из ингредиентов снятого с производства препарата Oomed компании Tetra, который, как утверждалось, работал против Amyloodinium ocellatum. Кроме того, в различных научных работах я нашел много тревожной информации об использовании этого препарата в качестве мутагена (Medical Dictionary Online и SCIRUS). Кроме того, в разговоре с Энтони Калфо об Oomed он вспомнил, что когда Oomed был доступен, его беспокоил компонент аминоакридин. Он рассказал мне об опасениях, которые были высказаны ему на курсе патологии рыб для аквариумистов в Университете Джорджии, по поводу того, что аминоакридин потенциально снижает шансы рыб на репродуктивный успех. Это касалось коммерческого разведения пресноводных рыб-ангелов и дискусов (Pterophyllum scalare и Symphysodon species соответственно), поэтому я не знаю, как это может относиться к морским рыбам и беспозвоночным, но это то, что должно заставить вас задуматься.

И последнее – это фактор формалина. В варианте лечения 4 я обсуждал ограниченную эффективность формалина против Amyloodinium ocellatum. Однако формалин, как сообщается, токсичен для водорослей и макрофитов/растений (Noga, 2000), что, на мой взгляд, ставит под вопрос его использование в рифовом аквариуме.

Прежде чем я почувствовал бы себя комфортно, используя это комбинированное средство в своем рифе, мне нужно было бы увидеть документальное подтверждение его эффективности против Amyloodinium ocellatum и, что более важно, результаты токсикологических тестов, гарантирующие его безопасность для обитателей моего аквариума. Ни того, ни другого мне найти не удалось. Если кому-то известны какие-либо данные, пожалуйста, не стесняйтесь разместить их на моем авторском форуме. Я буду рад увидеть их. До тех пор я знаю, что не буду его использовать.

Вариант лечения 8: Аскорбиновая кислота

Это еще один препарат, который претендует на звание безопасного для рифов лекарства от морского бархата. На упаковке указано (пожалуйста, потерпите меня, так как производитель довольно плохо переводит с немецкого на английский и все еще использует старое название Oodinium для этого паразита): “Устраняет оодиниум в соленой воде. Безопасен для беспозвоночных и водорослей. Для достижения наилучших результатов выполните программу лечения. Удалите угольные и другие химические фильтры. Механически фильтруйте через зубную нить или губку. Не используйте озоновые или ультрафиолетовые стерилизаторы или протеиновый скиммер. Нитрифицирующие бактерии не пострадают, но будут подавлены. После обработки произведите частичную подмену воды и используйте Axxxxxxx Bxxxxx для оживления нитрифицирующих бактерий”. На бутылке также указан активный ингредиент – аскорбиновая кислота. Если вы не знаете, что такое аскорбиновая кислота, возможно, вы слышали о ней под более распространенным названием – витамин С. Я не смог найти упоминаний об использовании аскорбиновой кислоты или витамина С для борьбы с Amyloodinium ocellatum ни в одной из статей или текстов о рыбах, которые я читал. В отсутствие документально подтвержденных научных исследований, подтверждающих эффективность этого метода лечения, я с осторожностью рекомендую его использовать. Возможно, я пропустил какое-то исследование, подтверждающее его эффективность, поэтому, если кто-то знает о таком исследовании, дайте мне знать на авторском форуме. До тех пор я не могу рекомендовать его использование.

Вариант лечения 9: Ультрафиолетовая стерилизация

Ультрафиолетовое излучение может убить инфекционные, свободно плавающие диноспоры Amyloodinium ocellatum (Noga, 2000), но его использование в качестве лекарства здесь имеет те же недостатки, что и при использовании против Cryptocaryon irritans. Пожалуйста, если вы хотите, посмотрите здесь это обсуждение. Достаточно сказать, что УФ-устройства могут быть полезны в борьбе с распространением болезни из аквариума в аквариум в коммерческих условиях, где используется центральная система фильтрации, но вряд ли помогут вылечить или даже контролировать распространение паразитов от рыбы к рыбе в выставочном аквариуме.

Вариант лечения 10: Озон

Мне нечего сказать об озоне. Он похож на ультрафиолет, так как большинство людей, использующих его для лечения и профилактики заболеваний, используют его в качестве стерилизатора. Однако, на мой взгляд, он может быть немного эффективнее УФ-стерилизатора, потому что озон не создает столько проблем с обслуживанием, как УФ-стерилизаторы, например, снижение эффективности по мере старения УФ-лампы или образования пленки на кварцевой гильзе, которая блокирует проникновение УФ-излучения и обработку воды, проходящей через устройство. Если генератор озона подключен к монитору или контроллеру ОВП, пользователь сможет отслеживать эффективность озона. Достаточно сказать, что озон можно использовать для контроля распространения болезни из аквариума в аквариум в центральной системе фильтрации, но я бы не стал рассчитывать на его излечение в выставочном аквариуме.

Вариант лечения 11: Биологический контроль

Хотя в аквариумных кругах бытует мнение, что различные чистящие организмы, а именно: морские окуни Labroides, пескари Elacatinus (ранее Gobiosoma) и креветки Lysmata, могут помочь вылечить такие заболевания, как Cryptocaryon irritans и Amyloodinium ocellatum, это мнение необоснованно. Хотя я обсуждал это более подробно в своих статьях о лечении морского лишая, я повторю основные моменты здесь. Ни Cryptocaryon irritans, ни Amyloodinium ocellatum не встречаются в природе, и вполне логично, что ни один более чистый организм не стал бы эволюционировать, чтобы питаться паразитом, который редко доступен. Кроме того, было показано, что в дикой природе бычки Elacatinus и морские окуни Labroides питаются почти исключительно гнатидными изоподами, так что вероятность того, что они могут быть полезны в борьбе с распространенными аквариумными патогенами, маловероятна. Кроме того, рыбы-чистильщики так же подвержены инфекциям, как и рыбы, которым они якобы помогают. Одним из первых признаков зараженной рыбы является потеря аппетита, что делает больных чистильщиков бесполезными.

Вариант лечения 12: Перекись водорода

Это одна из новейших идей лечения Amyloodinium ocellatum и, на мой взгляд, одна из самых интересных и перспективных. В первом исследовании использовались 20 молодых тихоокеанских нитчатых рыб (Polydactylus sexfilis), страдающих от инфекции Amyloodinium ocellatum. Они были случайным образом разделены на четыре аквариума с открытой водой. Один аквариум был контрольным и не получал никакого лечения. Контрольные рыбы были обследованы, и было обнаружено, что в среднем 16,6 ± 16,2 трофонтов на биопсию жабр. Рыбы, которые подлежали обработке различными уровнями перекиси водорода, также были осмотрены, и было обнаружено, что в среднем 35,6 ± 38,7 трофонтов на биопсию жабр. Поток воды в три обрабатываемых аквариума был остановлен, и в них была добавлена перекись водорода в концентрациях 75, 150 и 300 ppm. Рыба подвергалась воздействию в течение тридцати минут, после чего поток воды был восстановлен, чтобы избавить резервуары от перекиси водорода. В течение одного часа после обработки все рыбы, подвергшиеся воздействию 300 ppm перекиси водорода, погибли, но рыбы, подвергшиеся воздействию 75 и 150 ppm, перенесли обработку без каких-либо смертей. Выжившие рыбы были осмотрены сразу после обработки, и было обнаружено, что в них больше нет паразитов. На следующий день они были осмотрены повторно. Обработанные рыбы по-прежнему были свободны от инфекций, в то время как у необработанных рыб было обнаружено увеличение количества трофонтов.

Другой тест был проведен на предприятии, где были получены больные рыбы. Ученые использовали резервуар для выращивания, в котором содержалась рыба, зараженная 16,3 ± 13,0 трофонтами на биопсию жабр. Этих рыб подвергали воздействию 75 ppm перекиси водорода в течение тридцати минут. Через день после воздействия количество трофонтов снизилось до 4,7 ± 0,6. Через шесть дней количество трофонтов снизилось до 1,0 ± 1,0. В этот момент рыбу повторно обработали 75 ppm перекиси водорода в течение еще тридцати минут. На следующий день после второй обработки трофонты не были обнаружены. Поскольку участники исследования не были уверены в эффекте перекиси водорода против трофонтов, они перевели рыб в чистый аквариум в это время.

Затем эти же люди провели эксперимент на мальках кефали (Mugil cephalus). Сначала они изучили воздействие перекиси водорода на здоровую рыбу. Три группы по десять здоровых рыб подвергались воздействию 75, 50 и 25 промилле перекиси водорода в течение тридцати минут. Через 24 часа выживаемость составила 20, 50 и 70% соответственно. Затем они решили испытать 25 промилле перекиси водорода на большом аквариуме для выращивания личинок. Этот резервуар вмещал 3000 литров воды и приблизительно три рыбы на литр. В течение недели до проведения испытания в этом резервуаре на предприятии происходило 200-1000 смертей в день от Amyloodinium ocellatum, в то время как стандартная ежедневная смертность должна была составлять 0,002%. Рыбу обрабатывали в течение 30 минут 25 ppm перекиси водорода. В течение трех дней после обработки смертность снизилась до менее 10 особей в день.

Прежде чем вы все побежите к аптечке, пожалуйста, помните, что это лечение в лучшем случае экспериментальное. Его можно легко передозировать и вызвать массовую гибель людей. Я бы подождал, пока не будут проведены дальнейшие исследования на предмет устойчивости различных морских декоративных растений к воздействию перекиси водорода. Чтобы внести ясность, я не рекомендую использовать перекись водорода. Если вы решите поэкспериментировать и использовать ее, вы вполне можете подвергнуть риску жизнь каждого обитателя вашего аквариума. Я упоминаю о ней только потому, что она многообещающая, и как о чем-то, за чем стоит следить в будущем, после проведения дополнительных испытаний. Если вы уничтожите свой аквариум с помощью этого метода лечения, не приходите потом ко мне плакаться.

Вариант лечения 13: Промывка и почти полная темнота

Промывка – это термин, используемый для описания процедуры, применяемой в аквакультуре пищевой рыбы, когда паразитарное заболевание поражает систему открытой воды. Это просто попытка достаточно быстрого оборота воды в аквариуме, чтобы прервать жизненный цикл паразитов. Другими словами, паразитов пытаются выпустить в море, пока они не прикрепились к рыбе. Эта стратегия в лучшем случае умеренно успешна. Причины этого довольно просты. Количество свободно плавающих диноспор в толще воды разбавляется при каждом водообмене, но это всего лишь разбавление. Их все еще достаточно для того, чтобы продолжать заражать и размножаться. Кроме того, даже будучи разбавленными, они продолжают размножаться и размножаться. Вы можете подумать, что это можно исправить с помощью более высокой скорости оборота, но заменить 100% воды (и диноспоры) таким образом невозможно. В книге Эскобала “Инженерия водных систем” дается отличное объяснение причин этого, если вы хотите ознакомиться с математикой, стоящей за этим утверждением.

Итак, почему этот метод используется в первую очередь? Во-первых, это удобно и просто. Свежая морская вода уже закачивается для поддержания качества воды; просто увеличить скорость обмена, чтобы попытаться вымыть паразитов, – это простое дело. Кроме того, попытка химиотерапевтического лечения будет затруднена в открытой системе из-за постоянного разбавления химического агента.

Итак, может ли этот метод быть полностью неудачным? Нет, не совсем. Некоторые исследования предлагают модифицировать этот метод для достижения большего успеха, и именно по этой причине я хочу обсудить его (Montgomery-Brock & Brock, 2001). В экспериментах с тихоокеанским нитчатым гольцом на Гавайях ученые опробовали технику промывки, но с одним изменением: накрыли прогоны для рыбы, чтобы снизить уровень освещенности почти до полной темноты. Идея заключалась в том, что условия низкой освещенности будут неблагоприятны для водорослей. Это, в свою очередь, лишит лососей подходящего субстрата, к которому они могли бы прикрепиться, оставив им только голые стенки скатов, что облегчит их вымывание в море.

В первом тесте использовали 26 слабозараженных рыб, полученных из рыбоводческого хозяйства, испытывающего трудности с Amyloodinium ocellatum. Эти особи были разделены на две равные группы. У рыб, содержавшихся под воздействием солнечного света, наблюдалось увеличение количества трофонтов, в то время как у рыб, содержавшихся в темноте, их количество уменьшилось. После этого испытания ферма, где возникли проблемы, покрыла несколько своих гончих путей, и там тоже наблюдалось резкое снижение смертности по сравнению с освещенными емкостями. Впоследствии эта ферма покрыла все свое поголовье и уже более года работает без вспышек Amyloodinium ocellatum.

Я хочу рассказать эту историю, чтобы расширить идею, которую я отстаивал в своей первой статье о Cryptocaryon irritans, в отношении карантина для скота. Я предпочитаю использовать аквариумы с голым дном и ежедневную подмену воды для всех новых рыб после их первого появления. Это облегчает чистку, но, как было показано, также является негостеприимным для томонтов Cryptocaryon irritans . Приведенные выше исследования придают дополнительную силу аргументу в пользу использования неестественной среды, такой как стеклянный аквариум с голым дном, для карантина, чтобы снизить вероятность заболевания. Это также противоречит убеждению, что якобы магические целебные свойства красивого, здорового, естественного выставочного аквариума могут вылечить даже подозрительную рыбу. В действительности, такой аквариум предлагает паразитам почти идеальное место для размножения; много подходящего субстрата для прилипания и множество потенциальных хозяев, заключенных в относительно небольшом водоеме.

Хотя некоторые люди указывают на огромное количество организмов, питающихся фильтрами в зрелом рифе, и утверждают, что они являются очень эффективными и действенными хищниками широкого спектра планктона, который включает промежуточные, свободно плавающие стадии рыбьих паразитов, опыт снова и снова показывает, что это ненадежное решение. Хотя принести домой подозрительное животное и поместить его в здоровый аквариум иногда помогает, с такой же вероятностью можно не справиться и заразить весь аквариум. Я бы утверждал, что во многих случаях, когда это срабатывает, вполне возможно, что больная рыба была заражена и вылечена от паразита множество раз в течение цепочки поставок. В коммерческих условиях с постоянным притоком новых животных вспышки заболеваний, с которыми необходимо бороться, являются обычным делом. Если это происходит несколько раз с конкретной рыбой, пока она добирается от рифа до вашего рифа, то в конце концов у нее вырабатывается иммунитет. Вполне вероятно, что некоторые из тех любителей, которые сообщают о появлении больной рыбы после того, как ее добавили в их экспозицию, являются не более чем случаями, когда естественный приобретенный иммунитет наконец-то сработал. При таком сценарии здоровье или отсутствие такового в конечном резервуаре не имеет значения. Просто время, воздействие и лечение, проведенное кем-то другим, спасли рыбу, а не опыт хоббиста или общее здоровье его экспозиции.

Обратите внимание, что хотя Amyloodinium ocellatum является динофлагеллятом, родственным водорослям, исследователи пришли к выводу, что паразиты не способны к фотосинтезу, и что недостаток солнечного света не оказывает прямого воздействия на паразита (Montgomery-Brock pers. comm.).

Надеюсь, я достаточно полно описал доступные варианты лечения этого паразита. Я настоятельно призываю аквариумистов занять проактивную позицию. Будьте строги и помещайте всех новых питомцев в карантин как минимум на месяц, а лучше на более длительный срок. Внимательно следите за едва заметными признаками этой инфекции. И, наконец, будьте готовы действовать быстро, используя проверенное лечение, если есть подозрение, что в вашем аквариуме присутствует этот патоген. На данный момент только медь и дифосфат хлорохина оказались достаточно эффективными и безопасными, чтобы я мог их использовать и рекомендовать. Я надеюсь на дальнейшее изучение перекиси водорода, поскольку считаю, что она обладает наибольшим потенциалом для безопасного для рифов лечения, но для этого необходимы дополнительные эксперименты.

Я хотел бы поблагодарить Энтони Калфо, Роберта Феннера, доктора Рона Шимека и Эндрю Тревор-Джонса за их редакционные советы и содержание.

Бартелме, Терри. 2003. “Новости с фронта войны с Cryptocaryon irritans, часть вторая из пяти” Advanced Aquarist, декабрь 2003.

Басслир, Джеральд. 1996. Diseases in Marine Aquarium Fish: Причины, симптомы, лечение. Вестмирбек, Бельгия: Bassleer Biofish.

Калфо, Энтони. перс. комм.

Cobb, Charles S., Michael G. Levy, & Edward J. Noga. 1998. “Развитие иммунитета у томатной рыбы-клоуна Amphiprion frenatus к динофлагеллятному паразиту Amyloodinium ocellatum” Журнал здоровья водных животных, том 10 № 3 стр. 259-263, 1998.

Колорни, Анджело и Питер Берджесс. 1997. ” Cryptocaryon irritans Brown 1952, причина “болезни белого пятна” у морских рыб: обновление” Aquarium Sciences and Conservation, 1:217-238, 1997.

Escobal, P. R. 1996. Aquatic Systems Engineering: Устройства и их функционирование. Окснард, Калифорния: Dimension Engineering Press.

Гратцек, д-р Джон Б., д-р Ричард Е. Вольке, д-р Эммет Б. Шоттс младший, д-р Дональд Доу и Джордж К. Блазиола. 1992. Aquariology: Болезни рыб и химия воды. Блэксбург, штат Вирджиния: Тетра Пресс.

Джоши, Санджай. 2003. “Топ-5 паразитов морских рыб” Журнал Aquarium Fish, сентябрь 2003.

Майкл, Скотт. 2002. “Борьба с морскими паразитами” Журнал “Аквариумные рыбки”, октябрь 2002 г.

Монтгомери-Брок, Ди и Джеймс А Брок. 2001. “Использование условий низкой освещенности как средство борьбы с болезнью Amyloodinium sp. на тихоокеанской нитчатой рыбке Polydactylus sexifilis” Aquaculture-2001: Book of Abstracts, page 450.

Montgomery-Brock, Dee, Vernon T Sato, James A Brock, & Clyde S. Tamaru. 2001. “Применение перекиси водорода для лечения эктопаразита Amyloodinium ocellatum (Brown 1931) на тихоокеанской нитчатой рыбке Polydactylus sexifilis” Журнал Всемирного общества аквакультуры, том 32, № 2, стр. 250-254, июнь 2001.

Монтгомери-Брок, Ди. перс. комм.

Нога, Эдвард Дж. 2000. Болезни рыб: Диагностика и лечение. Эймс, штат Айова: Издательство Университета штата Айова.

Noga E.J. and Levy M.G. 1995. Dinoflagellida (Phylum Sarcomastigophora) In: P. T. K. Woo (ed.). Fish Diseases and Disorders. Том 1: Инфекции протозоанов и метазоанов. Уоллингфорд, Оксон, Соединенное Королевство: CAB International. стр. 1-25.

Паперна, Илан. 1980. ” Инвазии Amyloodinium ocellatum (Brown, 1931) (Dinoflagellida) в культивируемой морской рыбе в Эйлиате, Красное море: эпизоотология и патология” Журнал болезней рыб 3:363-372, 1980.

Паперна, Илан. 1984. “Химический контроль инфекций Amyloodinium ocellatum (Brown, 1931) (Dinoflagellida): испытания in vitro и лечение инфицированных рыб” Аквакультура 38:1-18, 1984.

Шимек, доктор Рональд. перс. комм.

Stoskopf, Michael. 1993. Рыбная медицина. Филадельфия, штат Пенсильвания: W. B. Saunders Company, страница 647.

Source: reefkeeping.com