Хімія та акваріум: Йод в рифових акваріумах 2: вплив на ріст макроводоростей

У попередній статті1 я детально описав багато аспектів йоду в океані та морських акваріумах, включаючи те, які форми він приймає, які організми, як відомо, використовують його, та джерела йоду в рифових акваріумах. Однак у доступній літературі відсутня будь-яка чітка інформація про те, чи є специфічна добавка йоду корисною для будь-яких організмів в акваріумах з кораловими рифами. Ця інформація відсутня з двох причин:

1. У літературі мало повідомлень про те, чи використовують більшість організмів, які ми зазвичай утримуємо в акваріумах, йод, і якщо так, то звідки вони його отримують (тобто з товщі води або з їжею). Швидше за все, ці тести ніколи не проводилися на багатьох наших улюблених мешканцях акваріумів, таких як корали, незважаючи на те, що багато з них містять значну кількість йоду (наприклад, йод в Xenia sp. і Sarcophyton sp.).
2. Навіть якщо відомо, що організм використовує йод з товщі води або навіть потребує його для виживання, неясно, чи природні джерела йоду в рифових акваріумах (наприклад, продукти харчування) задовольнять цю вимогу. Тільки тестування в реальних умовах акваріума може дати відповідь, хоча отримана відповідь може варіюватися в залежності від природи обраного акваріума (тобто від кількості йоду в імпортованих та експортованих продуктах).

З усіх організмів, описаних в моїй попередній статті, макроводорості, очевидно, є найбільш вивченими щодо йоду. Можливо, така увага до макроводоростей пояснюється тим, що вони мають так багато різних способів використання йоду і є одними з небагатьох організмів, які, як відомо, мають потребу в розчиненому йоді з товщі води. (В якості альтернативи, можна стверджувати, що це відомо, тому що вони були широко вивчені, а не навпаки, але ми залишимо філософію на інший день).

В якості відправної точки для дослідження того, чи є добавки йоду цінними в рифових акваріумах, я вирішив вивчити вплив додаткового йоду на швидкість росту двох видів макроводоростей (неідентифікований вид Chaetomorpha, який я отримав багато років тому з Inland Aquatics, і Caulerpa racemosa). Я вибрав макроводорості для цього початкового дослідження, тому що:

1. Відомо, що вони поглинають розчинний йод з товщі води.
2. Їх легко вирощувати і вивчати за відносно короткий проміжок часу.
3. Все більше акваріумістів використовують макроводорості для експорту поживних речовин, тому максимізація росту макроводоростей важлива для багатьох акваріумістів

Насправді, остання причина – це те, чому я вибрав макроводорості, які я вибрав. Вони не належать до видів макроводоростей з найвищим вмістом йоду (Таблиця 1), але вони є двома основними видами, для яких, на мою думку, акваріумісти найбільше хотіли б оптимізувати темпи зростання. Цікаво відзначити в таблиці 1, наскільки сильно рівень йоду в макроводоростях насправді варіюється між видами, і він також, здається, змінюється в залежності від сезону, температури води і глибини, навіть в межах одного виду.6,7 Отже, люди, які вирощують інші види макроводоростей, можуть отримати зовсім інші результати з додаванням йоду, які я отримав з двома видами, описаними в цій статті.

Таблиця 1. Літературні концентрації йоду для диких макроводоростей (за винятком трьох значень Caulerpa з акваріумів). Ті, що мають найвищі значення, позначені червоним кольором, а жовті секції відносяться до видів, протестованих пізніше в цій статті.

Види макроводоростей	Вміст йоду (проміле на суху речовину)
Rhodophyta (червоні водорості)	–
Grateloupia turu-turu 3	69
Tichocarpus crinitus 3	430
Chondrus pinnulatus 3	170
Chondrus yendoi 3	300
Chondrus sp. 5	7400
Chondrococcus sp. 5	141
Ptilota filicina 3	4200
Ceramium kondoi 3	140
Campylaephora hypnaeoides 3	940
Myriogramme yezoensis 3	7500
Polysiphonia japonica 3	550
Rhodomela larix 3	230
Polycavernosa dentata 4	437
Gigartina acicularis 4	252
Centrocerus clavulatum 4	518
Bryocladia thysigera 4	342
Hypnea musciformis 4	457
Hypnea musciformis 5	742
Jania rubens 4	155
Gracilaria corticata 5	1360
Gracilaria sp. 5	3654
Acantophora specifera 5	123
Laurencia obtusa 5	1435
–	–
Phaeophyta (ламінарії та бурі водорості)	–
Dictyota dichotoma 3	47
Dictyota bartayresii 5	544
Dictyota dumosa 5	548
Chordaria flagelliformis 3	880
Analipus japonicus 3	51
Desmarestia viridis 3	1200
Chorda filum 3	84
Laminaria japonica 3	5600
Costaria costata 3	85
Pelvitia wrightii 3	1200
Sargassum pallidum 3	–
листові сегменти	140
повітряні міхури	77
стебло	90
Саргас звичайний 4	804
Саргасове дерево десятироздільне 5	1294
Bachelotia antillarim 4	83
Padina durvilliue 4	271
Padina tetrastomatica 5	612
Spatoglassum asperum 5	851
Colpomenica sinuosa 5	1679
–	–
Chlorophyta (Зелені водорості)	–
Enteromorpha clathrata 3	21
Enteromorpha flexuosa 4	60
Enteromorpha sp. 5	1177
Ulva fenestrata 3	130
Ulva fasciata 4	55
Ulva fasciata 5	1194
Chaetomorpha moniligera 3	24
Chaetomorpha antennina 4	144
Chaetomorpha antennina 5	1124
Chaetomorpha linum 4	68
Chaetomorpha sp. 5	362
Claudophora stimpsonii 3	75
Claudophora pinnulata 5	4885
Caulerpa taxifola 4	89
Caulerpa sertularoide 5	312
Caulerpa sp. в акваріумах2	440, 843 та 1083
Corallina sp. 5	1277
–	–
Зародкові (Рослини, морські трави)	–
Zostera asiatica 3	45
Zostera marina 3	23

Чи поглинають макроводорості розчинний йод?

Перше питання, яке необхідно вирішити при перевірці того, чи будуть макроводорості стимулюватися до росту при додаванні йодних добавок, полягає в тому, чи можуть вони поглинати дозовані форми йоду. Було проведено багато досліджень щодо того, які форми йоду поглинаються макроводоростями, хоча жодне з них не стосувалося конкретно двох видів макроводоростей, які будуть тестуватися в цій статті. Виявляється, що макроводорості в цілому можуть поглинати як йодид, так і йодат, віддаючи перевагу йодиду.8-12 Ступінь переваги, здається, варіюється від виду до виду, причому більшість з них здатні використовувати обидві форми. З цієї причини я вибрав йодид для своїх досліджень росту.

Що вже відомо про потреби макроводоростей в йоді?

Для двох видів, які мене цікавлять, я не знайшов нічого в літературі про потреби в йоді. Деякі види макроводоростей мають потребу в йоді для росту. Наприклад, бура водорость Ectocarpus siliculosus потребує щонайменше 0,0015 ppm I- для вегетативного росту і 0,0025 ppm I- для нормального формування і дозрівання плюріолокулярних спорангіїв, хоча вона може вижити без росту в розчинах з дефіцитом йоду.13 При підвищених рівнях йоду ріст цього виду збільшується приблизно до 0,2 ppm I-, де ріст вирівнюється, і залишається постійним до принаймні 20 ppm I-.13

Laminaria saccharina, як інший приклад, показує, що проростання мейоспор збільшується з концентрацією йоду приблизно до 0,1 ppm. У цьому випадку підходить або йодид, або йодат. Цей же вид нечутливий до концентрації йоду після проростання.14

Червона макроводорость Polysiphonia urceolata має темпи росту, які лінійно збільшуються з концентрацією йоду від 0,1 до 1 ppm йоду.15 Ті ж самі дослідники показали, що Nemalion sp. не показав жодних змін у зростанні з концентрацією йоду, а Goniotrichum elegans був пригнічений при концентрації йоду вище природного рівня. Було показано, що макроводорості Asparagopsis armata оптимально ростуть при концентраціях йодиду або йодату 0,6 ppm, а при рівнях вище 1,8 ppm ріст пригнічується.16

Коротше кажучи, виявляється, що деякі види макроводоростей потребують більше йоду, ніж інші, а деякі можуть не потребувати його взагалі. Отже, насправді неможливо зробити будь-які корисні висновки про те, чи буде Chaetomorpha sp. або Caulerpa racemosa стимулювати ріст за допомогою добавок йоду, без фактичного тестування їх в реальних умовах акваріума.

Опис тесту на ріст

У цьому розділі наведено короткий опис тестів на ріст, щоб більшість акваріумістів могли зрозуміти, що було зроблено. У більш детальному розділі в кінці статті я даю всі деталі для тих, хто хоче зрозуміти це більш повно.

Вода, яку я використовував для тестів на ріст, була зроблена з розчинної океанської солі, яка знаходилася в звичайному акваріумі протягом 4-8 тижнів до використання. Цей акваріум містив живий камінь і пісок, різних безхребетних, і в ньому росла досить велика кількість макроводоростей, як Chaetomorpha sp. так і Caulerpa racemosa. Йод ніколи спеціально не дозувався в цей акваріум, але його годували двічі на день пластівчастим кормом OSI. До нього також додавали залізо, як описано в попередній статті, щоб переконатися, що ріст макроводоростей не обмежується нестачею заліза.17

Зразки макроводоростей і вода, що використовувалася в дослідженнях, були взяті з цього акваріума. Очікується, що вода має низький рівень вмісту йоду в акваріумах, оскільки йод не був спеціально дозований і оскільки в акваріумі росла велика кількість макроводоростей. Тим не менш, я не повідомляю про будь-які вимірювання йоду в цій воді, оскільки на даний момент я не впевнений у надійності доступних хобі-наборів. Я не виявив ніякого йоду за допомогою ICP-OES (який в цих зразках не може виявити значення нижче 0,3 ppm йоду), як я описав у своїй першій статті про йод.1 Вода в цьому акваріумі не мала виявлених нітратів за допомогою наборів Salifert і LaMotte (

Рисунок 1. Схема розташування подвійного ряду блюдець із зразками під люмінесцентними лампами (показано синім кольором). Зразки з додатковим йодом (червоні) чергувалися з тими, що не отримували його (зелені).

Дослідження росту проводили в невеликих прозорих пластикових блюдцях, освітлених флуоресцентними лампами. Було протестовано по 14 зразків кожного виду. Половина з них отримувала додатковий йодид (0,05 ppm) у воді, а половина не отримувала жодних добавок йоду. До всіх зразків також було додано додатково 4 проміле нітратів та 0,06 проміле фосфатів для імітації типових акваріумів та для того, щоб зростання не було обмежене поживними речовинами. Зразки не перемішували та не аерували. У всіх зразках щодня проводилася 100% підміна води.

Зразки макроводоростей зважували на початку дослідження, а потім знову в кінці. Блюдця були розміщені в два ряди вздовж середини 2,5 футів 4-футових флуоресцентних ламп, приблизно на 5 дюймів нижче ламп, як показано на рисунку 1. Chaetomorpha sp. вирощували протягом 10 днів, а Caulerpa racemosa протягом 21 дня.

Вплив йоду на Chaetomorpha sp.

Виявляється, що Chaetomorpha sp. дуже сильно зросла в ході цього дослідження. Один екземпляр виріс більш ніж в шість разів від своєї початкової ваги за цей 10-денний період, і навіть найповільніші екземпляри виросли більш ніж в три рази від своєї початкової ваги.

Рисунок 2. Зростання зразків Chaetomorpha sp. в залежності від положення в тест-апараті.

Середній зразок, який отримував додатковий йод, збільшився в 5,1 рази від своєї початкової ваги протягом 10-денного періоду. Середній зразок, який не отримував додаткового йоду, збільшився в 4,7 рази від своєї початкової ваги протягом 10-денного періоду. Статистичний аналіз цієї 9% різниці у зростанні (5,1х проти 4,7х) показав, що вона не є статистично значущою (p=0,47 за допомогою стандартного t-тесту).

Цікаво, що ріст, здається, залежить від розміщення вздовж флуоресцентних ламп. Зразки на кінцях рядів, очевидно, росли повільніше. Ці дані показані на рисунку 2, де “Положення під лампами” відноситься до розміщення з боку в бік, і кожне положення має одну позицію з додаванням йоду і одну без додавання йоду. Зразки в середині експерименту мали вищу швидкість росту, ніж ті, що знаходилися біля боків водяної бані. Цей результат, ймовірно, пов’язаний з різницею в інтенсивності освітлення в залежності від положення, оскільки ті, що знаходилися на кінцях, були частково захищені від тих частин ламп, що були вимкнені в один бік, боковими стінками водяної бані (рис. 1).

Якщо припустити, що інтенсивність освітлення дійсно викликала відмінності в рості, то можна провести інший вид статистичного аналізу, де можна порівняти зразки при еквівалентному освітленні. У цьому випадку можна використовувати парний t-тест, щоб побачити, чи мають зразки, розташовані поруч один з одним (тобто при однаковому освітленні, але з додаванням і без додавання йодиду), різну швидкість росту. Використовуючи цей тип парного t-тесту, результати все ще не відповідають рівню, який дозволяє стверджувати про справжню статистичну значущість (у цьому випадку p = 0,16, що означає, що існує 16% ймовірність того, що обробка йодом не має ефекту, а відмінності були зумовлені випадковими варіаціями, і 84% ймовірність того, що існує реальна різниця між зразками з додаванням і без додавання йоду; вчені зазвичай хотіли б, щоб ця 16% ймовірність зменшилася до 5%, або, бажано, набагато менше, перш ніж стверджувати про “значущість”). Можливо, більш масштабне дослідження змогло б продемонструвати, що виявлена 9% різниця є “значущою”.

Незалежно від того, чи є вона статистично значущою чи ні, або чи було б більш масштабне дослідження більш чітким, фактична спостережувана різниця в швидкості росту (9%) невелика. Більшість акваріумістів не будуть настільки стурбовані оптимізацією швидкості росту, щоб 9% були критичними.

Вплив йоду на Caulerpa racemosa

Виявляється, що Caulerpa racemosa росла повільніше протягом 21-денного дослідження. Два екземпляри навіть загинули (по одному в кожній групі). Кожен зразок Caulerpa racemosa починався як просто столон (зростаючі кінчики) рослини, без таломів (круглих кульок), хоча деякі з них мали ризоїди (коріння). До кінця випробування багато зразків мали ризоїди, а деякі – таломи, і більшість з них втратили частину столону біля кінця, яка була зрізана.

Рисунок 3. Зростання зразків Caulerpa racemosa в залежності від положення в тест-апараті.

Середній зразок, який отримував додатковий йод, збільшився на 17% вологої маси під час випробування. Середній зразок, який не отримував додаткового йоду, збільшився на 12% вологої маси під час випробування. Ці значення, однак, вводять в оману. Більшість зразків дійсно мали значний новий ріст, але вони також загинули з того кінця, де вони були відрізані від материнської макроводорості. Варіація між зразками була досить великою, причому деякі зразки фактично втратили вагу в цілому, а деякі набрали більше 40% від своєї початкової ваги. Статистичний аналіз цієї 41% різниці у прирості (17% проти 12%) показав, що вона не є статистично значущою (p=0,66 за допомогою стандартного t-тесту і 0,70 за допомогою парного t-тесту).

Цікаво, що ріст Caulerpa racemosa, здається, не так сильно залежить від положення під лампами (рис. 3). Можливо, Caulerpa racemosa не потребує такої кількості освітлення для оптимального росту, як Chaetomorpha sp.

Висновки

Жоден з досліджуваних видів макроводоростей не показав статистично швидшого росту при додаванні йоду. Можливо, більш масштабні дослідження покажуть такий ефект. Тим не менш, не здається, що можна навести вагомі аргументи на користь додавання йоду, якщо метою є ріст цих двох видів, особливо у випадку Chaetomorpha sp., де ріст є дуже добрим як з додатковим йодом, так і без нього.

Ще менш зрозуміло, чи отримають будь-які інші організми користь від добавок йоду. Література не підтверджує необхідність цього, але тестування було дуже обмеженим. Я ініціював деякі додаткові експерименти з грибними коралами (Actinodiscus sp.), прикріпивши їх до тих же типів блюдець, що і в цьому дослідженні, і дозволив їм врівноважуватися в рефугіумі мого основного акваріума протягом декількох тижнів. Ці грибні корали можуть в майбутньому стати основою для додаткових досліджень росту, які будуть проводитися подібно до описаних тут для макроводоростей.

У наступних статтях я сподіваюся повідомити про темпи виснаження йоду в акваріумах, а також про методи тестування, але поки що я не задоволений результатами, отриманими за допомогою випробуваних мною йодних наборів. Перш ніж сказати щось певне про них, я планую провести більш широке тестування.

Деталі тесту на ріст

У цьому розділі наведено більш детальний опис того, як були проведені тести на ріст.

Я почав з соляної суміші Instant Ocean, пристосованої до природної солоності морської води (35 проміле), виміряної за допомогою електропровідності (53 мСм/см). Потім воду витримували протягом 4-8 тижнів в акваріумі, що містив живий камінь і пісок, різних безхребетних, таких як щетинисті черв’яки, амфіподи і грибовидні корали, які були переміщені з моєї основної акваріумної системи. Ця система не мала додаткової фільтрації і лише повітряний камінь для аерації та циркуляції. Вона підтримувалася при температурі приблизно 80 ºF. У ній також росла досить велика кількість макроводоростей, як Chaetomorpha sp. так і Caulerpa racemosa. Йод в цей акваріум спеціально не вносився, але його годували двічі на день пластівцями OSI (0,15 грама на день). До нього також додавали залізо, як описано в попередній статті, щоб гарантувати, що ріст макроводоростей не буде обмежений нестачею заліза.17

Зразки макроводоростей і вода, що використовувалася в дослідженнях, були взяті з цього акваріума. Я не повідомляю про будь-які вимірювання йоду в цій воді, оскільки на даний момент я не впевнений у надійності доступних аматорських наборів. Я не виявив жодного йоду за допомогою ICP-OES (який у цих зразках не може виявити значення нижче 0,3 ppm йоду), як я описав у своїй першій статті про йод.1 У воді в цьому акваріумі не було виявлено нітратів за допомогою наборів Salifert та LaMotte (

Дослідження росту проводилися в невеликих прозорих пластикових блюдцях, приблизно 5 дюймів в поперечнику і 1 дюйм в глибину. Вони містили близько 125 мл води. Виявляється, що кількість йоду, додана в кожне блюдце (0,05 ppm = 0,006 мг/блюдце), була, ймовірно, достатньою для забезпечення зростаючих макроводоростей кількістю йоду, яка зазвичай присутня в новій тканині, що вирощувалася. Наприклад, у таблиці 1 різні зразки Chaetomorpha sp. містять 24, 68, 144, 362 та 1124 ppm йоду на суху вагу. Кількість нової тканини, що виросла в блюдці з найбільшим ростом, становила трохи менше грама (у вологому стані) від загального нового росту, або близько 0,13 грама сухої ваги (у більшості зразків було значно менше). Ця тканина поглинала 0,003, 0,009, 0,02, 0,05 і 0,15 мг йоду. За період росту в 10 днів кількість йоду, доданого в кожне блюдце, становила 10 днів х 0,006 мг/день = 0,06 мг. Отже, було додано більше йоду, ніж можна було б пояснити ростом всіх зразків, окрім літературного зразка з найвищим вмістом йоду. Проте, макроводорості можуть використовувати йодид, а потім вивільняти його в іншій формі, а також зразки могли додати більше тканини в кінці тесту, ніж на початку, просто тому, що вони були більшими тоді, і тому могли бути виснажені йодидом в ці пізніші дні.

Блюдця витримували при температурі 80-82 ºF, зануривши їх приблизно на 1/2″ в циркулюючу водяну баню. Дно блюдець майже повністю контактувало з водою, щоб максимально контролювати температуру зразків шляхом розміщення зразків на тонких металевих стрижнях.

Зразки освітлювали, помістивши їх під 2 48-дюймові флуоресцентні лампи (по 40 Вт кожна). Одна з них була “холодною білою” лампою фірми ABCO, а друга – “Softtone” фірми Phillips. Лампи були увімкнені протягом 12 годин на день. Блюдця, що містили зразки, були розміщені в два ряди вздовж середини 2,5 футів 4-футових флуоресцентних ламп, приблизно на 5 дюймів нижче ламп, як показано на рисунку 1. Весь апарат був частково накритий для зменшення випаровування, хоча деяке випаровування (і, як наслідок, збільшення солоності води в блюдцях), ймовірно, відбуватиметься щодня перед наступною 100% заміною води.

Було протестовано 14 зразків кожного виду. Половина з них отримувала додатковий йодид (0,05 ppm) у воді, а половина не отримувала жодних добавок йоду. Вода для тесту готувалася наступним чином:

З акваріума було відібрано два літри води. Нітрат додавали, вносячи на всі 2 літри 0,8 мл маточного розчину нітрату натрію у воді DI (6,96 г NaNO₃ в 500 мл; 10,160 ppm нітрат-іону). Кінцева концентрація нітратів у досліджуваній воді становила 4,1 ppm. Фосфат додавали, вносячи 2,0 мл вихідного розчину додекагідрату фосфату натрію на всі 2 літри (Na₃PO₄ – 12 H₂O) у воді DI (0,117 г в 500 мл; 58 ppm фосфат-іонів). Кінцева концентрація фосфатів у досліджуваній воді становила 0,06 ppm. Ці нітрати та фосфати були додані для імітації типових акваріумів та для того, щоб переконатися, що ріст не був обмежений поживними речовинами.

Потім два літри води розділили навпіл. Половину використовували як є (вже з додаванням нітратів і фосфатів) для контрольних зразків. До другої половини додавали йодид, починаючи з 1,090 ppm йодного стандартного розчину, що складається з йодиду натрію у воді (0,644 грама NaI в 500 мл води DI). Цей стандарт щодня свіжо розводили 1:10 у воді DI (що становило 109 ppm йодиду), а потім додавали до іншого літра акваріумної води з підвищеним вмістом нітратів та фосфатів.

Зразки не перемішували та не аерували. У всіх зразках щодня проводилася 100% підміна води.

Макроводорості зважували на початку дослідження, а потім ще раз в кінці за допомогою високоточних електронних ваг. Перед зважуванням кожен зразок макроводоростей обережно витирали насухо паперовим рушником.

Зразки Chaetomorpha sp. мали початкову вагу від 0,115 до 0,206 грамів. Вони були отримані з великої зростаючої кулі макроводоростей шляхом обережного витягування декількох ниток. Їх зважували, а потім відразу ж використовували для тесту. . Chaetomorpha sp. вирощували протягом 10 днів

Зразки Caulerpa racemosa складалися лише зі зростаючих кінчиків (столонів) рослини, без таломів (круглих кульок), і лише деякі з них мали ризоїди (коріння). Їх обрізали до 3-7 дюймів, а потім дозволили відновитися в акваріумі протягом 4 днів перед зважуванням і початком тесту. До кінця тесту багато зразків мали ризоїди і кілька таломів, а більшість втратили частину столону біля кінця, який був відрізаний. Початкова вага Caulerpa racemosa коливалася від 0,125 г до 0,715 г. Кінцева вага була лише трохи вищою, а в деяких випадках нижчою. Один зразок у кожній когорті (+/- йодид) загинув і повністю розпався протягом 21 дня випробувань.

Посилання

1. Йод у морських акваріумах: частина I, Ренді Холмс-Фарлі, Advanced Aquarist, березень 2003 р.
2. Вниз по течії; експорт з рифових акваріумів, Рональд Л. Шимек,
3. Концентрація йоду та брому рослинами в Японському та Охотському морях. Саєнко Г. Н., Кравцова І. І., Іваненко В. В., Шелудько С. І. Далекосхідний наук. центр, Ін-т хімії, Владивосток, СРСР. Морська біологія (Берлін, ФРН) (1978), 47(3), 243-50.
4. Інструментальний нейтронно-активаційний аналіз рівня йоду в чотирнадцяти видах морських водоростей з прибережного поясу Гани. Серфор-Армах, Я.; Ньярко, Б. Д. Б.; Карбу, Д.; Осае, Е. К.; Анім-Сампонг, С.; Акахо, Е. Х. К. Відділ хімії, Національний інститут ядерних досліджень, Комісія з атомної енергії Гани, Легон-Аккра, Гана. Журнал радіоаналітичної та ядерної хімії (2000), 245(2), 443-446.
5. Розподіл йоду в морських водоростях регіону Гоа. Солімабі; Дас, Б. Національний інститут океанології, Гоа, Індія. Індійський журнал морських наук (1977), 6(2), 180-1.
6. Сезонні зміни, біоакумуляція та запобігання втратам йоду в морських водоростях. Mairh, O. P.; Ramavat, B. K.; Tewari, A.; Oza, R. M.; Joshi, H. V. Cent. Salt Mar. Хім. Res. Inst., Бхавнагар, Індія. Фітохімія (1989), 28(12), 3307-10.
7. Біологічні аспекти поведінки йоду при взаємодії водоростей з морською водою. Кравцова, Ю. Ю., Саєнко, Г. В., Кузьменко, О. В., Кузьменко, О. В. Кравцова, Ю. Ю., Саєнко, Г. Н. СРСР. Редактор(и): Краснов, Є. В. Взаємодія води з живим організмом, Тр. Simp. (1979), Дата наради 1975, 1 146-52.
8. Перетворення йодату в йодид в культурах морського фітопланктону. Вонг, Джордж Т. Ф.; Пійомсомбун, Аджчарапорн У.; Данстан, Вільям М. Кафедра наук про океан, Землю та атмосферу, Університет Старого Домініону, Норфолк, Вірджинія, США. Морська екологія: Progress Series (2002), 237 27-39.
9. Поглинання та елімінація хімічних форм йоду-131 морськими макрофітами. Светашева, С. К. Ін-т біол. Южн. Морей, Севастополь, СРСР. Гідробіологічний журнал (1984), 20(4), 94-6.
10. Хімічні форми радіоактивного йоду в морській воді та їх вплив на морські організми. Хірано, Сігекі, Ішіі, Тошіакі, Накамура, Рьоічі, Мацуба, Міцуе, Коянагі, Таку. Natl. Inst. Radiol. Sci., Накамінато, Японія. Радіоізотопи (1983), 32(7), 319-22.
11. Вплив стабільного йоду на концентрацію радіоактивного йоду морськими організмами. Хірано, Сігекі, Мацуба, Міцуе, Коянагі, Таку. Div. Mar. Radioecol., Natl. Inst. Radiol. Sci., Накамінато, Японія. Radioisotopes (1983), 32(8), 353-8.
12. Поглинання та елімінація хімічних форм йоду-131 морськими макрофітами. Светашева, С. К. Ін-т біол. Южн. Морей, Севастополь, СРСР. Гідробіологічний журнал (1984), 20(4), 94-6.
13. Вплив йоду на ріст і розвиток бурої водорості Ectocarpus siliculosus в аксеничних культурах. Вулері, Марті Л.; Левін, Ральф А. Скріппс, Інститут океанології, Каліфорнійський університет, Ла-Хойя, Каліфорнія, США. Фікологія (1973), 12(3-4), 131-8.
14. Екологічний контроль гаметогенезу у Laminaria saccharina. III. Вплив різних концентрацій йоду та співвідношення хлоридів і йодидів. Hsiao, Stephen I.; Druehl, Louis D. Dep. Biol. Sci., Simon Fraser Univ., Burnaby, BC, Can. Канадський журнал ботаніки (1973), 51(5), 989-97.
15. Вплив йоду та брому на ріст деяких червоних водоростей у культурі аксени. Фріс, Лісбет. Ун-т Уппсала, Швеція. Physiol. Plantarum (1966), 19(3), 800-8.
16. Вплив йоду на ріст листя Asparagopsis armata (Rhodophyceae, Bonnemaisoniales) в культурі з гілок, що несуть списи. Codomier, Louis; Segot, Madeleine; Combaut, Georges. Groupe Rech. Biol. Chim. Veg. Mar., Cent. Univ. Univ. Perpignan, Perpignan, Fr. Giornale Botanico Italiano (1979), 113(5-6), 387-93.
17. Залізо в рифовому акваріумі Ренді Холмс-Фарлі, Advanced Aquarist, серпень 2002 р.,

Source: reefs.com