Химия и аквариум: Йод в рифовых аквариумах 2: влияние на рост макроводорослей

В предыдущей статье1 я подробно описал многие аспекты йода в океане и в морских аквариумах, включая то, какие формы он принимает, какие организмы используют его, а также источники йода в рифовых аквариумах. Однако в доступной литературе отсутствует какая-либо четкая информация о том, полезны ли специальные добавки йода для каких-либо организмов в аквариумах с коралловыми рифами. Эта информация отсутствует по двум причинам:

1. В литературе мало сообщений о том, использует ли большинство организмов, которые мы обычно содержим в аквариумах, йод, и если да, то как они его получают (из толщи воды или из пищи). Скорее всего, эти тесты никогда не проводились на многих из наших любимых обитателей аквариума, таких как кораллы, несмотря на то, что многие из них содержат значительное количество йода (например, йод в Xenia sp. и Sarcophyton sp.).
2. Даже если известно, что организм использует йод из толщи воды или даже требует его для выживания, неясно, будут ли естественные источники йода в рифовых аквариумах (например, продукты питания) соответствовать требованиям. Только тестирование в реальных аквариумных условиях может дать ответ, хотя ответ вполне может варьироваться в зависимости от характера выбранного аквариума (то есть от количества йода в импортируемых и экспортируемых продуктах).

Из всех организмов, описанных в моей предыдущей статье, макроводоросли, очевидно, наиболее изучены в отношении йода. Возможно, такое внимание к макроводорослям объясняется тем, что они имеют так много различных способов использования йода и являются одними из немногих известных организмов, нуждающихся в растворенном йоде из толщи воды. (В качестве альтернативы можно утверждать, что это известно потому, что они были широко изучены, а не наоборот, но оставим философию на другой день).

В качестве отправной точки для исследования того, имеют ли йодные добавки ценность в рифовых аквариумах, я решил изучить влияние дополнительного йода на скорость роста двух видов макроводорослей (неопознанный вид Chaetomorpha, который я приобрел много лет назад в Inland Aquatics, и Caulerpa racemosa). Я выбрал макроводоросли для этого первоначального исследования, потому что:

1. Известно, что они поглощают растворимый йод из толщи воды.
2. Их легко выращивать и изучать в относительно короткие сроки.
3. Все больше и больше аквариумистов используют макроводоросли для экспорта питательных веществ, поэтому максимальный рост макроводорослей важен для многих аквариумистов.

Собственно, именно по этой последней причине я и выбрал макроводоросли. Они не относятся к видам макроводорослей с самым высоким уровнем йода (Таблица 1), но это два основных вида, для которых, по моему мнению, аквариумисты больше всего хотели бы оптимизировать темпы роста. Интересно отметить в Таблице 1, насколько сильно уровни йода в макроводорослях различаются между видами, и, похоже, они также зависят от сезона, температуры воды и глубины, даже в пределах одного вида.6,7 Следовательно, люди, выращивающие другие виды макроводорослей, могут получить совсем другие результаты при добавлении йода, чем я получил с двумя видами, описанными в этой статье.

Таблица 1. Концентрации йода в литературе для диких макроводорослей (кроме трех видов Caulerpa, полученных в аквариумах). Виды с самыми высокими значениями отмечены красным цветом, а желтые секции относятся к видам, протестированным далее в этой статье.

Вид макроводоросли	Содержание йода (ppm сухой массы)
Rhodophyta (красные водоросли)	–
Grateloupia turu-turu 3	69
Tichocarpus crinitus 3	430
Chondrus pinnulatus 3	170
Chondrus yendoi 3	300
Chondrus sp. 5	7400
Chondrococcus sp. 5	141
Ptilota filicina 3	4200
Ceramium kondoi 3	140
Campylaephora hypnaeoides 3	940
Myriogramme yezoensis 3	7500
Polysiphonia japonica 3	550
Родомела ларикс 3	230
Polycavernosa dentata 4	437
Gigartina acicularis 4	252
Centrocerus clavulatum 4	518
Bryocladia thysigera 4	342
Hypnea musciformis 4	457
Hypnea musciformis 5	742
Jania rubens 4	155
Gracilaria corticata 5	1360
Gracilaria sp. 5	3654
Acantophora specifera 5	123
Laurencia obtusa 5	1435
–	–
Phaeophyta (Келп и бурые водоросли)	–
[…]	47
[…]	544
[…]	548
[…]	880
[…]	51
[…]	1200
[…]	84
[…]	5600
[…]	85
[…]	1200
[…]	–
[…]	140
[…]	77
[…]	90
[…]	804
[…]	1294
[…]	83
Padina durvilliue 4	271
Padina tetrastomatica 5	612
Spatoglassum asperum 5	851
Colpomenica sinuosa 5	1679
–	–
Хлорофита (зеленые водоросли)	–
Enteromorpha clathrata 3	21
Enteromorpha flexuosa 4	60
Enteromorpha sp. 5	1177
Ulva fenestrata 3	130
Ulva fasciata 4	55
Ulva fasciata 5	1194
Chaetomorpha moniligera 3	24
Chaetomorpha antennina 4	144
Chaetomorpha antennina 5	1124
Chaetomorpha linum 4	68
Chaetomorpha sp. 5	362
Claudophora stimpsonii 3	75
Claudophora pinnulata 5	4885
Caulerpa taxifola 4	89
Caulerpa sertularoide 5	312
Caulerpa sp. в аквариумах2	440, 843 и 1083
Corallina sp. 5	1277
–	–
Embryophyta (Растения, морские травы)	–
Zostera asiatica 3	45
Zostera marina 3	23

Поглощают ли макроводоросли растворимый йод?

Первый вопрос, который необходимо решить при проверке того, будут ли макроводоросли стимулироваться к росту при добавлении йодных добавок, заключается в том, могут ли они поглощать дозированные формы йода. Было проведено множество исследований о том, какие формы йода усваиваются макроводорослями, но ни одно из них не касалось конкретно двух видов макроводорослей, которые будут протестированы в этой статье. Оказалось, что макроводоросли в целом могут поглощать как йодид, так и йодат, отдавая предпочтение йодиду.8-12 Степень предпочтения, по-видимому, варьируется от вида к виду, при этом большинство из них могут использовать оба вида. По этой причине я выбрал йодид для своих исследований роста.

Что уже известно о потребностях макроводорослей в йоде?

Для двух видов, представляющих здесь интерес, я не смог найти в литературе ничего о потребностях в йоде. Некоторые виды макроводорослей действительно нуждаются в йоде для роста. Например, бурой водоросли Ectocarpus siliculosus требуется не менее 0,0015 ppm I- для вегетативного роста и 0,0025 ppm I- для нормального формирования и созревания плюриолокулярных спорангиев, хотя она может выживать без роста в растворах с дефицитом йода.13 При повышенном уровне йода рост этого вида увеличивается примерно до 0,2 ppm I-, где рост прекращается, и остается постоянным по крайней мере до 20 ppm I-.13

Laminaria saccharina, как еще один пример, показывает, что прорастание мейоспор увеличивается с увеличением концентрации йода примерно до 0,1 промилле. В этом случае подходит либо йодид, либо йодат. Этот же вид нечувствителен к концентрации йода после прорастания.14

У красной макроводоросли Polysiphonia urceolata скорость роста линейно увеличивается при концентрации йода от 0,1 до 1 ppm йода.15 Те же исследователи показали, что у Nemalion sp. рост не меняется в зависимости от концентрации йода, а Goniotrichum elegans ингибируется при концентрации йода выше естественного уровня. Макроводоросль Asparagopsis armata, как было показано, оптимально растет при концентрации йодида или йодата 0,6 ppm йода, а при концентрации выше 1,8 ppm рост становится подавленным.16

Короче говоря, получается, что некоторым видам макроводорослей требуется больше йода, чем другим, а некоторым он вообще не нужен. Следовательно, невозможно сделать какие-либо полезные выводы о том, будет ли у Chaetomorpha sp . или Caulerpa racemosa какой-либо толчок к росту от добавки йода, не протестировав их в реальных аквариумных условиях.

Описание теста на рост

В этом разделе дается краткое описание тестов на рост, чтобы большинство любителей могли понять, что было сделано. В более подробном разделе в конце статьи я привожу все детали для тех, кто хочет понять это более полно.

Вода, которую я использовал для тестов на рост, была сделана из соли Instant Ocean, которая находилась в обычном аквариуме в течение 4-8 недель до использования. В этом аквариуме были живые камни и песок, различные беспозвоночные и довольно большое количество макроводорослей, растущих в нем, как Chaetomorpha sp., так и Caulerpa racemosa. Йод в этот аквариум никогда специально не добавлялся, но его кормили дважды в день хлопьевидным кормом OSI. В него также добавляли железо, как описано в предыдущей статье, чтобы убедиться, что рост макроводорослей не ограничивается недостатком железа17.

Образцы макроводорослей и вода, использованная в исследованиях, были взяты из этого аквариума. Ожидалось, что вода будет находиться на низком уровне содержания йода в аквариумах, поскольку йод не был специально дозирован, а в аквариуме росло большое количество макроводорослей. Тем не менее, я не сообщаю о каких-либо измерениях йода в этой воде, поскольку в настоящее время я не уверен в надежности имеющихся наборов для хобби. Я не обнаружил никакого йода с помощью ICP-OES (который в этих образцах не может определить значения ниже 0,3 ppm йода), как я описал в своей первой статье о йоде.1 В воде этого аквариума не было обнаружено нитратов с помощью наборов Salifert и LaMotte (

Рисунок 1. Схема, показывающая расположение двойного ряда блюдец с образцами под флуоресцентными лампами (показаны синим цветом). Образцы с добавлением йода (красные) чередуются с образцами без йода (зеленые).

Исследования роста проводились в небольших прозрачных пластиковых блюдцах, освещенных флуоресцентными лампами. Было протестировано 14 образцов каждого вида. Половина из них получала дополнительный йодид (0,05 ppm) в воде, а половина не получала добавок йода. Во все образцы также добавляли дополнительно 4 ppm нитрата и 0,06 ppm фосфата, чтобы имитировать типичные аквариумы и попытаться убедиться, что рост не ограничен питательными веществами. Образцы не перемешивались и не аэрировались. Во всех образцах каждый день производилась 100% подмена воды.

Образцы макроводорослей были взвешены в начале исследования, а затем снова в конце. Блюдца были установлены в двойной ряд вдоль середины 2,5 футов 4-футовых флуоресцентных ламп, примерно на 5 дюймов ниже ламп, как показано на рисунке 1. Chaetomorpha sp. выращивали в течение 10 дней, а Caulerpa racemosa – в течение 21 дня.

Влияние йода на Chaetomorpha sp.

Оказалось, что в ходе исследования Chaetomorpha sp. сильно выросли. Один экземпляр за 10 дней вырос более чем в шесть раз по сравнению с исходным весом, и даже самые медленные экземпляры выросли более чем в три раза по сравнению с исходным весом.

Рисунок 2. Рост образцов Chaetomorpha sp. в зависимости от положения в испытательном аппарате.

Средний образец, получавший дополнительный йод, вырос до 5,1 раза от своего начального веса за 10-дневный период. Средний образец, не получавший дополнительного йода, за 10-дневный период вырос в 4,7 раза больше своего первоначального веса. Статистический анализ этой 9% разницы в росте (5,1х против 4,7х) показал, что она не является статистически значимой (p = 0,47 при использовании стандартного t-теста).

Интересно, что рост, по-видимому, зависит от расположения вдоль флуоресцентных трубок. Образцы на концах рядов, очевидно, росли медленнее. Эти данные показаны на рисунке 2, где “Положение под лампами” относится к расположению от края до края, и в каждой позиции есть образцы, в которые добавлен йод, и образцы, в которые йод не добавлен. Образцы в середине эксперимента имели более высокую скорость роста, чем образцы, расположенные у краев водяной бани. Этот результат, скорее всего, обусловлен различиями в интенсивности освещения в зависимости от положения, поскольку образцы, расположенные в центре, были частично экранированы боковыми стенками водяной бани от тех частей ламп, которые находились с одной стороны (рис. 1).

Если предположить, что интенсивность освещения действительно вызывает различия в росте, то можно провести другой вид статистического анализа, при котором сравниваются образцы при эквивалентном освещении. В этом случае можно использовать парный t-тест, чтобы проверить, отличаются ли темпы роста образцов, находящихся рядом друг с другом (то есть при одинаковом освещении, но с добавлением и без добавления йодида). При использовании этого типа парного t-теста результаты все еще не соответствуют уровню, позволяющему утверждать о настоящей статистической значимости (в данном случае p = 0,16, что означает, что существует 16% вероятность того, что обработка йодом не имеет никакого эффекта и различия были вызваны случайными вариациями, и 84% вероятность того, что существует реальная разница между образцами с добавлением и без добавки; ученые обычно хотят, чтобы эта 16% вероятность снизилась до 5%, а лучше намного меньше, прежде чем утверждать о “значимости”). Возможно, более масштабное исследование позволило бы доказать, что наблюдаемая разница в 9% является “значимой”.

Независимо от того, является ли она статистически значимой или нет, и было ли бы более крупное исследование более четким, фактически наблюдаемая разница в скорости роста (9%) невелика. Большинство аквариумистов не будут настолько озабочены оптимизацией скорости роста, чтобы 9% были критическими.

Влияние йода на Caulerpa racemosa

Оказалось, что Caulerpa racemosa росла медленнее в течение 21 дня. Два экземпляра даже погибли (по одному в каждой группе). Каждый образец Caulerpa racemosa начинался как столон (растущие кончики) растения, без талломов (круглых шариков), хотя у некоторых были ризоиды (корни). К концу испытания у многих образцов появились ризоиды, у нескольких – таллии, а большинство образцов потеряли часть столона вблизи того конца, который был срезан.

Рисунок 3. Рост образцов Caulerpa racemosa в зависимости от положения в испытательном аппарате.

Средний образец, получивший дополнительный йод, вырос на 17% по влажному весу за время испытания. Средний образец, не получавший дополнительного йода, вырос на 12% по влажному весу во время испытания. Однако эти значения вводят в заблуждение. Большинство образцов действительно имели значительный новый рост, но они также погибли с того конца, где они были отрезаны от материнской макроводоросли. Разница между образцами была довольно большой: некоторые образцы в целом потеряли вес, а некоторые набрали более 40% от своего первоначального веса. Статистический анализ этой 41% разницы в росте (17% против 12%) показал, что она не является статистически значимой (p = 0,66 при использовании стандартного t-теста и 0,70 при использовании парного t-теста).

Интересно, что рост Caulerpa racemosa, похоже, не так сильно зависит от положения под лампами (Рисунок 3). Возможно, Caulerpa racemosa не требует такого количества освещения для оптимального роста, как Chaetomorpha sp.

Резюме

Ни один из протестированных видов макроводорослей не показал статистически значимого ускорения роста при добавлении йода. Возможно, более крупные исследования покажут такой эффект. Тем не менее, не похоже, что можно привести убедительные доводы в пользу добавки йода, если целью является рост этих двух видов, особенно в случае Chaetomorpha sp., где рост очень хороший как с добавкой йода, так и без нее.

Полезны ли добавки йода для других организмов, еще менее ясно. Литература не подтверждает эту необходимость, но испытания были очень ограниченными. Я начал несколько дополнительных экспериментов с грибовидными кораллами (Actinodiscus sp.), прикрепив их к тем же типам блюдец, что и в данном исследовании, и дал им уравновеситься в рефугиуме моего основного аквариума в течение нескольких недель. В будущем эти грибовидные кораллы могут стать основой для дополнительных исследований роста, которые будут проводиться аналогично тем, что описаны здесь для макроводорослей.

В будущих статьях я надеюсь рассказать о скорости истощения запасов йода в аквариумах, а также о методах тестирования, но пока меня не устраивают результаты, которые я получил с помощью наборов йода, которые я пробовал. Прежде чем сказать о них что-то определенное, я планирую провести их более тщательное тестирование.

Детали теста на рост

В этом разделе приводится более подробное описание того, как проводились тесты на рост.

Я начал с солевой смеси Instant Ocean, настроенной на естественную соленость морской воды (35 ppt), измеренную по электропроводности (53 мСм/см). Затем вода выдерживалась в течение 4-8 недель в аквариуме с живыми камнями и песком, различными беспозвоночными, такими как щетинистые черви, амфиподы и грибовидные кораллы, которые были переведены из моей основной аквариумной системы. В этой системе не было дополнительной фильтрации, а для аэрации и циркуляции воздуха использовался только воздушный камень. В ней поддерживалась температура около 80 ºF. В ней также росло довольно большое количество макроводорослей, как Chaetomorpha sp., так и Caulerpa racemosa. Йод в этот аквариум специально не добавлялся, но его кормили дважды в день хлопьевидным кормом OSI (0,15 грамма в день). В него также добавляли железо, как описано в предыдущей статье, чтобы убедиться, что рост макроводоросли не ограничивается недостатком железа.17

Образцы макроводорослей и вода, использованная в исследованиях, были взяты из этого аквариума. Я не сообщаю о каких-либо измерениях содержания йода в этой воде, поскольку в настоящее время я не уверен в надежности имеющихся наборов для хобби. Я не обнаружил йода с помощью ICP-OES (который в этих образцах не может определить значения ниже 0,3 ppm йода), как я описал в своей первой статье о йоде.1 В воде этого аквариума не было обнаружено нитратов с помощью наборов Salifert и LaMotte (

Исследования роста проводились в небольших прозрачных пластиковых блюдцах, около 5″ в поперечнике и 1″ глубиной. Они содержали около 125 мл воды. Оказалось, что количество йода, добавленное в каждое блюдце (0,05 ppm = 0,006 мг/блюдце), скорее всего, было достаточным для обеспечения растущих макроводорослей тем количеством йода, которое обычно присутствует в новых тканях, которые были выращены. Например, в таблице 1 различные образцы Chaetomorpha sp . содержат 24, 68, 144, 362 и 1124 ppm йода в сухом весе. Количество новой ткани, выращенной в блюдце с наибольшим ростом, составило чуть меньше грамма (влажного) общего количества нового роста, или около 0,13 грамма сухого веса (большинство образцов было значительно меньше). Эта ткань затем поглотила бы 0,003, 0,009, 0,02, 0,05 и 0,15 мг йода. За период роста в 10 дней количество йода, добавленного в каждое блюдце, составило 10 дней x 0,006 мг/день = 0,06 мг. Следовательно, было добавлено больше йода, чем было бы учтено в процессе роста всех водорослей, кроме литературного образца с самым высоким содержанием йода. Тем не менее, макроводоросли могут использовать йодид и затем выделять его в другой форме, а также образцы могли добавить больше ткани в конце теста, чем в начале, просто потому, что тогда они были больше, и поэтому могли быть истощены йодидом в более поздние дни.

Блюдца поддерживали при температуре 80-82 ºF, погружая их примерно на 1/2″ в циркулирующую водяную баню. Дно блюдец почти полностью соприкасалось с водой, чтобы обеспечить максимальный контроль температуры образцов путем размещения образцов на тонких металлических стержнях.

Образцы освещались путем размещения их под двумя 48-дюймовыми флуоресцентными лампами (40 Вт каждая). Одна лампа была “холодного белого цвета” от ABCO, а вторая – “Softtone” от Phillips. Лампы были включены в течение 12 часов в день. Блюдца с образцами были установлены в двойной ряд вдоль середины 2,5 футов 4-футовых флуоресцентных ламп, примерно на 5 дюймов ниже ламп, как показано на рис. 1. Весь аппарат был частично накрыт для уменьшения испарения, хотя некоторое испарение (и, соответственно, увеличение солености в блюдцах), предположительно, происходило каждый день до следующей 100% смены воды.

Было протестировано 14 образцов каждого вида. Половина из них получала добавку йодида (0,05 ppm) в воду, а половина не получала добавки йода. Вода для теста была приготовлена следующим образом:

Из аквариума было отобрано два литра воды. Нитрат добавлялся путем пролива всех 2 литров 0,8 мл исходного раствора нитрата натрия в DI воде (6,96 г NaNO₃ в 500 мл; 10 160 ppm нитрат-иона). Конечная концентрация нитрата в воде для анализа составила 4,1 ppm. Фосфат добавлялся путем пролива всех 2 литров 2,0 мл исходного раствора додекагидрата фосфата натрия (Na₃PO₄ – 12 H₂O) в DI воде (0,117 г в 500 мл; 58 ppm фосфат-иона). Конечная концентрация фосфата в исследуемой воде составляла 0,06 ppm. Нитрат и фосфат были добавлены для имитации типичных аквариумов и для того, чтобы убедиться, что рост не ограничен питательными веществами.

Затем два литра воды были разделены пополам. Половина была использована как есть (уже с добавлением нитрата и фосфата) для контрольных образцов. В другую половину добавляли йодид, начиная с основного раствора йода 1 090 ppm, состоящего из йодида натрия в воде (0,644 грамма NaI в 500 мл воды DI). Этот стандарт каждый день разбавляли 1:10 в DI воде (получая 109 ppm йодида), а затем добавляли в другой литр аквариумной воды с добавлением нитратов и фосфатов.

Образцы не перемешивали и не аэрировали. Во всех образцах каждый день производилась 100% подмена воды.

Макроводоросли взвешивались в начале исследования, а затем в конце с помощью высокоточных электронных весов. Перед взвешиванием каждый образец макроводоросли осторожно вытирался насухо бумажным полотенцем.

Начальный вес образцов Chaetomorpha sp. варьировался от 0,115 до 0,206 грамма. Они были получены из большого растущего шара макроводоросли путем осторожного вытягивания нескольких нитей. Они были взвешены и сразу же использованы для теста. . Chaetomorpha sp. выращивали в течение 10 дней.

Образцы Caulerpa racemosa состояли только из растущих верхушек (столонов) растения, без талломов (круглых шариков), и только некоторые имели ризоиды (корни). Они были обрезаны до 3-7 дюймов и затем им дали восстановиться в аквариуме в течение 4 дней до взвешивания и начала теста. К концу теста у многих образцов появились ризоиды, у нескольких – талли, и большинство образцов потеряли часть столона около того конца, который был срезан. Начальный вес Caulerpa racemosa колебался от 0,125 г до 0,715 г. Конечный вес был лишь немного выше, а в некоторых случаях ниже. Один образец в каждой когорте (+/- йодид) погиб и полностью распался в течение 21 дня испытания.

Ссылки

1. Йод в морских аквариумах: часть I Рэнди Холмс-Фарли Advanced Aquarist март 2003.
2. Down the Drain; Exports from Reef Aquaria by Ronald L. Shimek,
3. Концентрация йода и брома растениями в Японском и Охотском морях. Саенко Г.Н., Кравцова И.И., Иваненко В.В., Шелудько С.И. Дальневосточный научный центр, Инст. химии, Владивосток, СССР. Морская биология (Берлин, Германия) (1978), 47(3), 243-50.
4. Инструментальный нейтронно-активационный анализ содержания йода в четырнадцати видах морских водорослей из прибрежной полосы Ганы. Серфор-Армах, Й.; Ньярко, Б. Дж. Б.; Карбу, Д.; Осае, Е. К.; Аним-Сампонг, С.; Акахо, Е. Х. К. Отдел химии, Национальный институт ядерных исследований, Комиссия по атомной энергии Ганы, Легон-Аккра, Гана. Журнал радиоаналитической и ядерной химии (2000), 245(2), 443-446.
5. Распределение йода в морских водорослях региона Гоа. Solimabi; Das, B. Natl. Inst. Oceanogr., Goa, India. Индийский журнал морских наук (1977), 6(2), 180-1.
6. Сезонные изменения, биоаккумуляция и предотвращение потери йода в морских водорослях. Mairh, O. P.; Ramavat, B. K.; Tewari, A.; Oza, R. M.; Joshi, H. V. Cent. Salt Mar. Chem. Res. Inst., Bhavnagar, India. Фитохимия (1989), 28(12), 3307-10.
7. Биологические аспекты поведения йода при взаимодействии водорослей с морской водой. Кравцова Ю. Ю., Саенко Г. Н. СССР. Редактор(ы): Краснов, Е. В. Взаимодействие с живыми водорослями, Тр. междунар. науч. Симп. (1979), Дата встречи 1975, 1 146-52.
8. Превращение йодата в йодид в культурах морского фитопланктона. Вонг, Джордж Т. Ф.; Пьюмсомбон, Аджарапорн У.; Данстан, Уильям М. Факультет наук об океане, Земле и атмосфере, Университет Олд Доминион, Норфолк, штат Вирджиния, США. Морская экология: Progress Series (2002), 237 27-39.
9. Поглощение и элиминация химических форм йода-131 морскими макрофитами. Светашева, С. К. Инст. биол. наук. Южн. Морей, Севастополь, СССР. Гидробиологический журнал (1984), 20(4), 94-6.
10. Химические формы радиоактивного йода в морской воде и его воздействие на морские организмы. Хирано, Шигеки; Исии, Тошиаки; Накамура, Риоичи; Мацуба, Мицуэ; Коянаги, Таку. Нац. инст. радиол. Sci., Nakaminato, Japan. Радиоизотопы (1983), 32(7), 319-22.
11. Влияние стабильного йода на концентрацию радиоактивного йода морскими организмами. Хирано, Шигеки; Мацуба, Мицуэ; Коянаги, Таку. Разд. мар. Radioecol., Natl. Inst. Radiol. Sci., Nakaminato, Япония. Радиоизотопы (1983), 32(8), 353-8.
12. Поглощение и элиминация химических форм йода-131 морскими макрофитами. Светашева, С. К. Инст. биол. наук. Южн. Морей, Севастополь, СССР. Гидробиологический журнал (1984), 20(4), 94-6.
13. Влияние йода на рост и развитие бурой водоросли Ectocarpus siliculosus в аксенических культурах. Woolery, Marti L.; Lewin, Ralph A. Scripps Inst. Oceanogr., Univ. California, La Jolla, CA, USA. Phycologia (1973), 12(3-4), 131-8.
14. Экологический контроль гаметогенеза у Laminaria saccharina. III. Эффекты различных концентраций йода и соотношения хлорида и йодида. Hsiao, Stephen I.; Druehl, Louis D. Dep. Biol. Sci., Simon Fraser Univ., Burnaby, BC, Can. Canadian Journal of Botany (1973), 51(5), 989-97.
15. Влияние йода и брома на рост некоторых красных водорослей в аксенической культуре. Фрис, Лисбет. Уппсальский университет, Швеция. Physiol. Plantarum (1966), 19(3), 800-8.
16. Влияние йода на рост листьев Asparagopsis armata (Rhodophyceae, Bonnemaisoniales) в культуре из копьеносных ветвей. Codomier, Louis; Segot, Madeleine; Combaut, Georges. Groupe Rech. Biol. Chim. Veg. Mar., Cent. Univ. Perpignan, Perpignan, Fr. Giornale Botanico Italiano (1979), 113(5-6), 387-93.
17. Железо в рифовом аквариуме Рэнди Холмс-Фарли Advanced Aquarist август 2002,

Source: reefs.com