Без кейворда

Протягом серпня-вересня 2006 року я працював у Ла-Паргера, Пуерто-Рико, допомагаючи в дослідженнях нересту коралів в рамках програми стажування в Університеті Північної Кароліни, Вілмінгтон (UNCW) та Університеті Пуерто-Рико, Маягес (UPRM). Метою цього дослідницького проекту було поглиблення знань щодо збору гамет коралів, вирощування та розселення личинок коралів, а також проведення низки експериментів щодо меж екологічної толерантності личинок коралів та екологічних взаємодій коралів з навколишнім середовищем. Ікру збирали з колоній славнозвісного, але зникаючого, корала Ельхорна, зоряних коралів та деяких інших. Ікру збирали в польових умовах та з колоній видів, які були зібрані на нерест і згодом замінені на рифі. Хоча наші зусилля були зосереджені на морській станції UPRM на острові Магейєс, наші польові роботи проводилися на багатьох рифових ділянках навколо Пуерто-Рико.

Нам пощастило, що група з проекту SECORE проводила семінар з питань статевого розмноження коралів у тому ж місці, де ми проводили свої дослідження. Проект SECORE (SExual COral REproduction) – це міжнародна ініціатива громадських акваріумів та інститутів, що займаються дослідженням коралів, спрямована на збереження шляхом сталого управління кораловими рифами. Група SECORE і моя група мали дуже схожі цілі, і протягом 10-денного нерестового бліцу ми допомагали один одному різними способами. Це був надзвичайно збагачуючий досвід для мене, не тільки завдяки тому, що я дізнався про роботу зі статевим розмноженням коралів, але й завдяки багаторазовим рифовим зануренням, які дали мені змогу зблизька побачити майже всі види кам’янистих коралів Карибського басейну.

До того, як корали почали нереститися, потрібно було провести багато підготовчих заходів. Вся діяльність, що передувала цій важливій події, була спрямована на збереження життя личинок коралів та їх вирощування до належних стадій розвитку. Наші дослідницькі зусилля були зосереджені на кількох видах: Acropora palmata (корал Ельхорн), Montastrea faveolata (корал Гірська зірка), Montastrea cavernosa (корал Велика зірка), Diploria strigosa (мозковий корал) та Favia fragum (корал Гольфбол). Всі ці види, окрім останнього, є важливими будівничими рифів. Оскільки корали ростуть прикріпленими до дна рифу, єдиний раз у своєму житті, коли вони рухаються, це коли вони починають життя як дрейфуючі гамети, а потім, пізніше, коли вони є плаваючими личинками, які називаються планулами. Личинки планули дуже чутливі до невеликих змін умов навколишнього середовища. Вплив підвищеної температури може мати серйозні наслідки для виживання личинок коралів (Bassim and Sammarco, 2003), а відкладення осаду може мати великі наслідки для успішного заселення та довгострокового виживання молодих коралів (Hodgson, 1990, Babcock and Davies, 1991). Дослідження нересту коралів, проведені в Пуерто-Ріко, були спрямовані, головним чином, на підвищення нашого розуміння особливостей ранньої історії життя коралів, щоб дізнатися більше про ці важливі рифоутворюючі кам’янисті корали.

Рисунок 1: Корал Елкхорн є основним будівничим карибських коралових рифів. Він виростає і стає найбільшим і найбільш впізнаваним коралом у світі, іноді досягаючи розмірів невеликого дерева. На жаль, в останні роки чисельність елхорнського коралу різко зменшилася. Цього літа він став першим коралом, який був внесений до списку видів, що перебувають під загрозою зникнення відповідно до Закону про зникаючі види.

Acropora palmata широко відомий як корал Ельхорна, оскільки його колонії складаються з товстих, широких гілок, і колонії ростуть, утворюючи одні з найбільших колоній серед усіх коралів. Корал Елкхорн має вирішальне значення для побудови рифів, оскільки він може рости дуже швидко, а також тому, що він створює міцну структуру рифу. Хоча раніше цілі рифові зони майже повністю складалися з цього виду, в останні роки чисельність популяції цього виду скоротилася на 90-99% від її колишньої чисельності на більшій частині ареалу. Зниження чисельності було достатньо тривожним, щоб внести цей корал до списку видів, що перебувають під загрозою зникнення і охороняються Законом про зникаючі види. Acropora palmata зустрічається майже виключно на дуже мілководді з дуже високою енергією. Навіть за наявності акваріумної системи, розробленої спеціально для A. palmata, результати виживання цього виду в неволі дуже погані, хоча належних зусиль було докладено небагато. Занепад цього важливого виду, що будує карибські рифи, підкреслює важливість вивчення способів розмноження цього виду як статевим, так і нестатевим шляхом.

Рисунок 2: Корал “Гірська зірка” виростає у масивні кургани, які можуть бути набагато більшими, ніж колонія на цій фотографії.

Оскільки чисельність ельхорнових коралів зменшилася, одним з видів коралів, який стає все більш важливим для побудови рифів, є Montastraea faveolata, корал “Гірська зірка”. Montastraea faveolata, M. annularis та M. franksi є спорідненими видами, які переважно виростають у масивні форми, і вони зустрічаються в широкому діапазоні середовищ існування. Хоча ці види ростуть швидше, ніж багато інших, їх темпи росту набагато повільніші, ніж у корала Елкхорна. На жаль, хоча ми мали намір провести велику роботу з цим видом, дуже високі температури попереднього року призвели до того, що багато колоній зазнали репродуктивних збоїв. Взимку 2005 року в районі Пуерто-Ріко та Віргінських островів спостерігалася аномально висока температура повітря. Вища за норму температура води трималася протягом багатьох місяців, що спричинило значне знебарвлення цього виду. Подія знебарвлення збіглася з початком періоду дозрівання гамет. Навіть через кілька місяців після знебарвлення багато з дійсно великих, зрілих колоній M. faveolata мали жовті плями, що могло бути пов’язано з неупередженим відновленням після знебарвлення або початком захворювання. Врешті-решт, ми спостерігали лише мізерну кількість виділення яйцеклітин/сперматозоїдів у цього виду, тому ми практично відмовилися від наших планів використовувати його для експериментів.

Рисунок 3: Нещодавно було виявлено, що помаранчеві екземпляри Montastrea cavernosa, такі як цей, отримують свою флуоресценцію завдяки присутності азотфіксуючих бактерій (Lesser et al , 2004).

Montastraea cavernosa – один з моїх улюблених коралів у Карибському морі. Це важливий рифоутворюючий корал, який може виростати до 2 м в поперечнику. Його ростові форми можуть бути масивними та інкрустованими, іноді покривними або стовпоподібними, але найчастіше він субмасивний. Я давно знав, що цей корал зустрічається в привабливій червоно-помаранчевій морфі, але діапазон кольорів, який я спостерігав лише в Пуерто-Ріко, був дуже різноманітним. Відомо, що помаранчева флуоресценція деяких екземплярів викликана наявністю симбіотичних азотфіксуючих ціанобактерій (Lesser et al , 2004). В межах цього виду існує дві форми росту, які, як припускають деякі таксономісти, можуть бути різними видами. Ці дві форми також можуть бути репродуктивно ізольованими, оскільки вони можуть транслювати свої гамети з різницею в кілька днів. Питання ускладнюється існуванням проміжних колоній, які демонструють характеристики обох форм у різних частинах однієї колонії.

Рисунок 4: Деякі екземпляри Diploria strigosa містять вражаючі сині кольори.

Атлантичний мозковий корал Diploria strigosa є дуже поширеним і легко впізнаваним видом на карибських рифах. Він характеризується масивною формою росту і зазвичай сильно меандроїдними кораловими долинами. Колонії цього виду часто розростаються у великі сферичні пагорби, і в них часто мешкає багато гігантських ялинкових черв’яків (Spirobranchus giganteus). Diploria strigosa є найпоширенішим з трьох видів роду Diploria. Інші види роду включають більш гостру борозенчасту D. clivosa, яка зазвичай зустрічається у воді глибиною менше 7 м, і зазвичай більшу борозенчасту D. labyrynthiformis, яка зустрічається в тому ж діапазоні глибин, що і D. strigosa, але зберігається на глибині, де D. strigosa не зустрічається (особисте спостереження).

Останнім видом, використаним для наших досліджень, був корал “м’ячик для гольфу”, Favia fragum. Цей вид відрізняється від раніше розглянутих тим, що досягає максимального розміру всього кілька сантиметрів в діаметрі. Він часто росте у кулястій формі, звідси і його назва, а також відрізняється тим, що це виводковий корал, а не нерестовик. Цей вид є поширеним і широко розповсюдженим у різних середовищах, починаючи від спокійних рифових зон, таких як зворотні рифи, мангрові зарості та зарості морської трави, але він також може зустрічатися в захищених мікросередовищах високоенергетичних рифів. Цей вид не є критично важливим рифоутворюючим видом, але він все ще служить модельним видом для вивчення виводкових коралів, оскільки він дуже численний, дозріває при відносно невеликих розмірах і випускає личинки щомісяця.

Перед нерестом

Ще до того, як основна команда прибула до Пуерто-Ріко, в Північній Кароліні та в Ла-Паргера було зроблено багато підготовчих заходів. Під час перебування у Вілмінгтоні ми з іншими стажерами працювали над будівництвом нерестовиків, камер для утримання личинок і камер для розселення личинок. Матеріали, які ми використовували для будівництва цих об’єктів, були в тій чи іншій формі нейлонової тканини, яку ми з’єднували за допомогою шиття. Хоча це було останнє, чого я очікував навчитися під час практики на кораловому нересті, використання швейної машини було першим, що я навчився робити на цій роботі. Тим часом, в Ла Паргера близько 100 вапнякових блоків двох форм були розміщені в різних місцях на декількох рифах, щоб отримати необхідну біотичну плівку, яка заохочує личинки коралів до поселення (Heyward and Negri, 1999). Один з типів блоків був створений з різним ступенем затінення та випасу для того, щоб створити невеликі спільноти організмів, що інкрустують. Оскільки личинки коралів можуть відчувати біологічні сигнали до поселення (Morse et al, 1996), експериментально створені блоки були використані для того, щоб побачити вплив спільноти на поселення та виживання коралів.

Прибувши до Ла-Паргера, ми облаштували приміщення для вирощування личинок коралів та проведення дослідницьких експериментів. Одним з наших перших завдань було облаштування зони культивування морської води та переобладнання більшої частини сантехніки. Ми обслужили швидкий піщаний фільтр та мікронний фільтр, який обробляв всю живильну воду з резервуару з морською водою. Ми також переробили більшу частину сантехніки, щоб доставити один контур дуже повільної води під високим тиском до десятка або близько того камер для личинок коралів і інший контур дуже високого потоку води для водних столів, які ми використовували для розміщення нерестових гілок A. palmata і колоній M. cavernosa і D. strigosa. Оскільки рух води є однією з областей мого інтересу та досвіду, мій проект полягав у конфігурації резервуару з максимальним потоком води, який використовувався для розміщення гілок A. palmata. Однією з проблем, пов’язаних зі збільшенням циркуляції води в наших резервуарах, було те, що вода, яка надходила, мала температуру 31°C / 87°F, тому було важливо, щоб додані мною механізми потоку води не підвищували температуру води. Зрештою, я вибрав тристоронній підхід до переміщення води в цьому резервуарі. Я додав маятниковий насос до лінії, що подає вхідну воду в резервуар. Два насоси Vortech на протилежних сторонах водяного столу включалися по черзі за допомогою світлового таймера Chauvet. Останнім зусиллям став високий 30-галонний полікарбонатний циліндр, який був переобладнаний для використання в якості самозапускаючого сифонного пристрою для нагнітання води. Поєднання всіх цих пристроїв для руху води призвело до сильного масового руху води, створюючи швидкість потоку, що перевищує 30 см/с у багатьох частинах резервуара. Деякі з гілок, які ми зібрали для цього резервуару, втратили тканину протягом декількох днів, можливо, через високу температуру води. Після цієї початкової невдачі більшість гілок, здавалося, добре переносили цей резервуар з високою пропускною здатністю; всі вони показали значне розширення поліпів, і ми не зазнали жодних подальших втрат.

Рис. 5: На цьому зображенні показано маятниковий насос, насос Vortech і пристрій для нагнітання, які забезпечували масовий рух води в цьому резервуарі, призначеному для тимчасового утримання нерестових гілок Acropora palmata.

Коралові гамети були зібрані з диких та утримуваних в неволі коралових колоній в декількох місцях навколо островів Ла-Паргера та Рінкон, Пуерто-Рико. Острів Магес знаходиться в центрі рифів Паргера (супутниковий знімок). Саме тут ми побудували наші системи вирощування коралів, і саме тут ми координуємо екскурсії на човнах та дайвінг. Для вирощування коралів ми зібрали близько восьми великих гілок A. palmata і по 12 колоній D. strigosa і M. faveolata. Всі колонії були зібрані з переднього рифу рифу Маргарита та рифу Медіа Луна, які знаходяться приблизно на півдорозі до краю шельфу або приблизно в трьох милях від берега. Невеликі колонії F. fragum були зібрані зі спокійного підводного рифу рифу Сан-Крістобаль та біля берега на острові Магес.

Для збору коралових гамет в польових умовах необхідно планувати збір ікри коралів там, де є велика кількість цільового виду, оскільки зазвичай не всі колонії одного виду коралів нерестяться в дану ніч. На щастя, в Пуерто-Ріко є кілька ділянок, де A. palmata все ще є домінуючим видом і налічує 100-1000 колоній. Північне узбережжя Пуерто-Ріко піддається впливу сильних течій і хвиль. Весь цей рух води обертається навколо північно-західного краю острова, що забезпечує велику циркуляцію і сприятливі умови для росту коралів Ельхорна в Рінконі і Баха-Гальярдо, де все ще існують деякі здорові зарості. Моя дослідницька група відвідала тільки Рінкон, але група SECORE розділила своїх членів і зібрала матеріали з обох місць. Рифи на Рінконі прилягають до берега, тому для нас було практично виконувати наші занурення та роботу з запліднення ікри звідти. Montastrea faveolata є набагато більш поширеним видом, ніж A. palmata в цілому, тому для цього виду ми змогли переїхати з острова Магейєс на інший риф у Паргера, який називається риф Туррамоте, але оскільки колонії, які не загинули від минулорічного відбілювання, все ще не змогли виробити значну кількість гамет, було дуже прикро приїжджати на цей риф кілька ночей поспіль лише для того, щоб побачити, як такі гігантські колонії випускають пучки ікринок / сперматозоїдів лише з крихітних ділянок колонії.

Оральний спосіб нересту можна класифікувати залежно від того, чи викидається ікра у товщу води, чи виводиться вона всередині організму. Корали, що транслюють ікру, випускають яйця та сперматозоїди у товщу води, і вони, як правило, мають річний репродуктивний цикл. Якщо корали, що випускають ікру, гермафродитні, вони упаковують яйцеклітини і сперматозоїди в плавучі пучки; в іншому випадку яйцеклітини і сперматозоїди випускаються окремо. Яйцеклітина і сперматозоїди спливають на поверхню, де вони змішуються, запліднюються і розносяться водними течіями. Корали, що виводять потомство, або виділяють сперму в товщу води, або самозапліднюються, і в цьому випадку сперматозоїди не виділяються. Внутрішньо запліднена яйцеклітина висиджується в тканинах батьківського корала, поки не перетвориться на личинку, після чого вона виходить з батьківського поліпа, як правило, через рот або кінчик щупальця. Хоча трансляційні нерести випускають величезну кількість крихітних ікринок одну або дві ночі на рік, деякі розплідники виробляють на порядок менше личинок, які випускаються періодично, протягом усього місяця або на кілька ночей кожного місяця протягом більшості місяців року. Планули і, як наслідок, первинні поліпи виводкових коралів, як правило, набагато більші, ніж у коралів-трансляторів. З усіх коралів, з якими ми працювали, F. fragum був єдиним виводковим коралом.

Успішний збір ікри радіоактивних коралів залежить від подолання двох перешкод: необхідно правильно розрахувати час нересту і фізично зібрати гамети. Важливо відзначити, що репродуктивні зусилля коралів починаються задовго до того, як вони завершуються масовим нерестом в останні літні місяці. Види, з якими ми працювали, починають виробляти гамети вже в листопаді – місяці, коли на нерест кам’янистих коралів впливає поєднання температури води (Mendes et al , 2002) і впливу сонячного світла (Penland et al , 2004). Для видів коралів, які нас цікавлять, нерест може відбуватися протягом одного-чотирьох днів, і зазвичай це може відбуватися в період від семи до 15 днів після повного місяця. Нерест відбувається після заходу сонця, і точний час виходу ікри залежить від виду та місця. У Рінконі ельхорн почав випускати гамети після 9 години вечора, але мозкові корали почали випускати їх лише майже опівночі. У деяких місцях час нересту настільки передбачуваний, що за ним можна вивіряти годинник, хоча зазвичай це не так. Весь нерест – це дуже злагоджена подія, яка раптово закінчується. Хоча сигнали, які ми використовували, були надійними для прогнозування виходу гамет у коралів в нашій досліджуваній зоні, час нересту коралів є дуже динамічним механізмом, опосередкованим різноманітними факторами, які ми тільки починаємо розуміти.

Збір гамет транслюючих коралів варіювався в залежності від виду коралів. Для видів з роздільними статями, таких як Montastrea cavernosa, збір сперми в польових умовах не є практичним, тому зрілі колонії розмножувалися в акваріумах в неволі. У Пуерто-Ріко Diplora strigosa нереститься дуже пізно, тому цей вид також нерестився в акваріумах. Після того, як ці два види віднерестилися, ми збирали запліднені ікринки, які накопичувалися на поверхні. Нерест коралів у неволі підходить для отримання скромної кількості личинок, але для того, щоб отримати величезну кількість коралових гамет, нам довелося збирати гамети в польових умовах за допомогою нерестових сіток або нерестовиків. Ікроуловлювачі – це просто великі конуси з плавучою чашечкою на кінчику і тонким рукавом по периметру, який охоплює напівжорстку трубку, щоб утримувати тканину в потрібній формі. Оскільки пучки яєць коралів плавучі, конічна форма нерестовика збирає плаваючі пучки яєць з великої площі або цілої колонії і направляє їх у плаваючу збірну чашу на кінчику. Коли виявилося, що в чашу більше не надходить ікринок, ми швидко закрили її кришкою і доставили зразок на берег, де його можна було змішати з іншою ікрою.

Збір гамет коралів не такий простий, як здається. Коли ми використовували сітки для вилову ікри під час припливу рифів Ельхорн у Рінконі, наші нерестові зусилля принесли лише близько 100 000 ікринок. Тим часом екіпаж SECORE вручну збирає планктонну сітку, щоб зібрати зграї ікри, які накопичуються на поверхні. Хоча наша поточна кількість ікринок могла б дати достатньо личинок для наших експериментів, після остаточного виснаження за успішністю запліднення та рівнем виживання, ми мали дуже невелику похибку, щоб досягти бажаних квот. Дуже щедрі пожертви гамет і личинок від SECORE дозволили нам провести дослідження з набагато більш комфортною кількістю личинок. Я хочу скористатися цією можливістю, щоб подякувати SECORE за їх внесок у наші дослідницькі експерименти.

Рисунок 6: Об’єм цього контейнера становить близько 3 галонів (10 літрів), і він містить кілька десятків тисяч яєць Acropora palmata, що розвиваються. На врізці показані круглі та однорідні ікринки, які є здоровими; все інше – це результат розпаду нерестового матеріалу, який руйнується.

Після нересту

Після того, як ікру зібрано, стрес, пов’язаний зі збором, спадає, і на зміну йому приходить тиск, пов’язаний з використанням ікри для виробництва коралів. З моменту запліднення ікринки до перетворення личинки на первинний поліп проходить багато різних стадій. Залежно від виду, розвиток гамет відбувається з різною швидкістю, і вкрай важливо знати терміни і вимоги кожної стадії, щоб успішно виробляти корали з коралової ікри.

Запліднення відбувається протягом перших кількох годин після нересту і є одним з найбільш важливих етапів у всьому процесі вирощування. Запліднення не тільки гарантує наявність зигот для розвитку в коралові личинки, але й визначає обсяг догляду, який буде проводитися пізніше. Відразу після збору ікри пучки ікринок повинні розпастися, щоб яйцеклітини і сперматозоїди могли змішатися і запліднитися. Гамети деяких видів не здатні до самозапліднення, тому бажано мати яйцеклітини та сперматозоїди з багатьох різних колоній, щоб максимізувати успіх запліднення. Протягом усього періоду запліднення пропорцією ікри маніпулюють, щоб досягти ідеального співвідношення яйцеклітин і сперматозоїдів. Якщо сперматозоїдів занадто мало, то не всі ікринки будуть запліднені; якщо сперматозоїдів занадто багато, то деякі ікринки будуть запліднені кілька разів (поліплоїдні), і вони загинуть (хоча деякі види Acropora зазвичай є поліплоїдними). Якщо яйцеклітина незапліднена або поліплоїдна, вона не буде розвиватися, а багаті поживними речовинами гамети розпадуться і можуть забруднити культуральну воду. Приблизно через дві години яйцеклітини повторно промивають, щоб видалити всі сперматозоїди, а також будь-яке сміття в культуральній воді. Після завершення промивання після запліднення ми витримували яйця протягом ночі в неглибоких контейнерах без перемішування, щоб вони могли пройти свої перші кілька розщеплень.

На наступний ранок ті ікринки, які не розвинулися належним чином, почали руйнуватися, що негативно вплинуло на якість культуральної води. Після ще декількох промивань ікринки, що розвивалися, переносили в неглибокі лотки з дуже повільним припливом свіжої морської води. Злив фільтрувався за допомогою сітки Nytek з дуже великою площею поверхні і дуже малим розміром осередків. На цьому етапі ікринки все ще дуже плавучі. Вони мають тенденцію накопичуватися як на поверхні, так і з боків контейнера, тому необхідний м’який рух води і періодичне ручне перемішування, щоб ікринки були рівномірно розподілені. У міру розвитку запліднені ікринки втрачають плавучість за рахунок метаболізму ліпідів, а також у них розвиваються війки і вони починають плавати. Коли личинки розподіляються трохи більш рівномірно по всій товщі води, вони починають прилипати до сітки фільтра, тому фільтр необхідно часто промивати і промивати назад. Тривалість цього періоду розвитку залежить в основному від виду. Типовому заплідненому яйцю A. palmat потрібно близько п’яти-семи днів, щоб розвинутися до стадії личинки, але деякі види Diploria демонструють надзвичайну швидкість розвитку. Diploria може розвинутися до повністю плаваючих личинок за 18 годин, хоча розвиток личинок в кінцевому підсумку залежить від виду, місцезнаходження та умов. Для того, щоб підготуватися до наступного етапу культивування, партії коралових ембріонів повинні постійно відбиратися і аналізуватися на предмет прогресу розвитку.

Навіть у партії коралових яєць не всі яйця розвиваються в плавунці з однаковою швидкістю, і не всі плавунці готові до заселення в один і той же час. Після того, як більшість яєць розвинулися в личинки планули, вони були в основному готові до використання в наших різних експериментах. Деяким партіям личинок потрібно було перешкодити оселитися в контейнерах, щоб їх можна було використовувати в експериментах з розселення. Розселення планули може стимулюватися наявністю біоплівки як хімічного індикатора того, що субстрат придатний для розселення (Хейворд і Негрі, 1999). Тому, щоб запобігти передчасному заселенню, ми часто видаляли всіх личинок з даного контейнера, щоб витерти і видалити біоплівку з їхньої культуральної посудини. Навіть з цими запобіжними заходами ми все одно мали заселення на всьому, від контейнера до ПВХ і самого екрану. ( Примітка редактора: Мікросередовище та пошукова поведінка личинок, що оселяються, ймовірно, залежить від численних сигналів, але оселення може не потребувати біоплівок. Є речі, які можна зробити, щоб пригнічувати заселення, і речі, які його посилюють, але потреба в підказках на даний момент є дуже невизначеною).

Рисунок 7: Це один з десятка лотків, що використовуються для вирощування личинок коралів. Ви можете бачити, що яйця, які розвиваються, мають тенденцію збиратися в грудочки на поверхні і з боків.

Дослідники досі мають лише дуже скромні знання про догляд за більшістю личинок коралів у неволі. Личинки планули – крихітні істоти, і вони взаємодіють з іншими крихітними істотами, іноді не найкращим чином. Під кінець наших зусиль по вирощуванню в нашу систему вторгся війчастий кораловий хижак, і це призвело до загибелі деяких з наших коралів-новобранців. На цьому відео в режимі сповільненої зйомки показано, як невелика зграя війчастих майже повністю з’їла великий первинний поліп F. fragum протягом приблизно години. Ми мали намір використовувати новобранців Favia для експериментів з випасу діадеми, але з появою цього непередбачуваного фактору, ми вирішили замість цього задокументувати та дізнатися все, що ми можемо від цього досі неідентифікованого найпростішого. За іронією долі, ці війчасті хижаки зовні нагадували плавунців за розміром, кольором і рухами. Оскільки війчасті споживають коралову тканину і зелені флуоресцентні білки, нового шкідника було особливо легко побачити за допомогою обладнання, що підсилює флуоресценцію.

Робота з коралами в дикій природі і в неволі все ще не є точною наукою. Можуть статися непередбачувані події, і для того, щоб винести уроки з досвіду незалежно від результату, очікування вченого і акваріуміста повинні бути досить гнучкими, щоб витримати удари долі. У цьому сезоні я був винагороджений двома такими навчальними подіями; один раз під час нашої колекції гамет, а інший – під час вирощування личинок. Протягом останніх двох десятиліть акваріумісти були піонерами культури коралів. В даний час професійні акваріумісти, які беруть участь в SECORE, знаходяться в авангарді цього нового аспекту культури коралів. Я сподіваюся, що з часом наші знання про нерест коралів збільшаться, так що подальші прориви в культурі коралів дадуть можливість домашнім акваріумістам все більше працювати зі статевим розмноженням коралів. Акваріумісти часто повідомляють про набір коралової ікри з личинок, випущених Pocillopora, Tubastrea і деякими видами Euphyllia. Багато з дуже бажаних великих поліпованих видів Scolymia, Cynarina, Dendrophylia та Balanophylia є виводковими коралами, які мають високу ціну, оскільки в даний час вони доступні лише в колекції дефіцитних, диких зразків. Вирощування личинок, випущених виводковими коралами, відносно легке, і хоча фрагментація дозволила акваріумістам безстатево розмножувати багато видів коралів, багато інших коралів все ще збираються з дикої природи у великих кількостях, оскільки не існує відомих методів їх розмноження в неволі. Через зниження чисельності деяких з цих видів Європейський Союз час від часу призупиняє їх ввезення. Я сподіваюся, що з часом акваріумісти стануть все більш охоче докладати зусиль для вдосконалення методів розмноження коралів в неволі, щоб ми могли зменшити тиск на колонії, зібрані в дикій природі, і щоб це хобі могло продовжувати збільшувати наше розуміння біології коралів в цілому.

Бебкок, Р. і П. Девіс. 1991. Вплив осаду на поселення Acropora millipora. Коралові рифи. Vol. 9: 209-205

Бассім, К. і П. Самарко. 2003. Вплив температури та амонію на розвиток та виживання личинок у склерактинових коралів (Diploria strigosa). Морська біологія, т. 142: 241-252.

Heyward, A. J., and A. P. Negri. 1999. Природні індуктори метаморфозу личинок коралів. Коралові рифи. Том 18: 273-279.

Ходжсон, Г. 1990. Осадження і розселення личинок рифового корала Pocillopora damicornis. Коралові рифи. Vol 9: 41-43.

Лессер, Майкл П., Чалрес Х. Мазел, Максим Ю. Горбунов, Пол Г. Флаковскі. 2004. Відкриття азотфіксуючих бактерій у коралах. Science. Vol 305:995-1000.

Мендес, Ж. М. і Ж. Д. Вудлі. 2002. Терміни розмноження Montastrea annularis: зв’язок з екологічними змінними. Серія “Морська екологія”. Vol 227: 241-251

Морс, А. Н. К., К. Івао, М. Баба, К. Шімоіке, Т. Хаяшібара та М. Оморі. 1996. Древній хемосенсорний механізм приносить нове життя кораловим рифам. Біологічний вісник, т. 191: 149-154.

Penland, L., Kloulechad, J. Idip, D. Woesik, R. 2004. Нерест коралів у західній частині Тихого океану пов’язаний з сонячною інсоляцією: докази численних нерестових подій у Палау. Coral Reefs. Vol. 23:133-140.

Source: reefkeeping.com