Без кейворда

Морской ич, заражение Cryptocaryon irritans, является одним из двух наиболее распространенных заболеваний морских рыб; второе – морской бархат, вызываемый Amyloodinium sp. (Michael, 2002 и Joshi, 2003). В этой серии статей, состоящей из двух частей, я расскажу о биологии этого ресничного паразита и обсужу множество методов лечения, средств, лекарств и эликсиров, которые были разработаны для спасения ваших рыб и иногда опустошения вашего кошелька. Я надеюсь помочь вам пробраться через многочисленные и часто ошибочные анекдоты, чтобы найти эффективное лечение, которое наилучшим образом соответствует вашим конкретным потребностям и потребностям ваших рыб.

Прежде чем принимать решение о лечении, вы должны быть достаточно уверены в том, что является возбудителем инфекции у рыб. Некоторые признаки заражения Cryptocaryon irritans – это трение или царапанье о декорацию или субстрат (такое поведение также известно как сверкание или мигание), затрудненное дыхание, увеличение слизистого слоя, потеря аппетита, ненормальное поведение при плавании, обтрепанные плавники, мутные глаза и, конечно же, характерные белые пятна. Эти характерные пятна обычно описываются как маленькие крупинки соли, прилипшие к телу рыбы. Даже при наличии всех этих внешних признаков лучшим диагностическим инструментом является микроскопическое исследование свежих плавников, жабр или соскобов кожи. Но, реалистично, крайне малое число людей, включая меня, когда-либо будут проводить подобную дифференциальную диагностику.

Это заболевание обычно связано с несколькими экологическими триггерами. Изменение температуры воды, воздействие высокого уровня аммиака, нитритов или нитратов, низкий уровень pH, низкий уровень растворенного кислорода, перенаселенность – все это факторы, способствующие возникновению заболевания. Можно объединить все эти факторы в общую категорию стресса, но я считаю более правильным рассматривать их как совершенно неестественные условия. На самом деле, Cryptocaryon irritans редко встречается в дикой природе, и еще более маловероятно, что он смертелен (Bunkley-Williams & Williams, 1994). Ич – это действительно болезнь, которая использует условия неволи для размножения и легкого поиска подходящих хозяев.

Cryptocaryon irritans продемонстрировал очень низкий уровень специфичности хозяина, что означает, что он будет заражать практически любую телеостровную рыбу в тропической морской среде. Хрящевые рыбы (акулы и скаты) оказываются устойчивыми, но все остальные подвержены инфекции (Colorni & Burgess, 1997). Было даже доказано, что он заражает различные виды пресноводных рыб, которые были акклиматизированы в соленой воде, а также морских рыб умеренного пояса, которые содержались на верхней границе своего теплового диапазона (Yoshinaga & Dickerson, 1994; Burgess & Matthews, 1995).

Несмотря на то, что все они являются возможными хозяевами, опыт показывает, что определенно существуют определенные группы рыб с более высокой и более низкой степенью восприимчивости. На одном конце спектра находятся угри, которые продемонстрировали общую устойчивость к Cryptocaryon irritans. На противоположном конце – рыбы-хирурги, причем голубой регал/гиппо-танг (Paracanthurus hepatus) – “коронованный король Ич”. Я имел дело буквально с сотнями этих рыб, и, вероятно, могу на пальцах одной руки сосчитать количество голубых регаловых тангов, которые, казалось, были полностью свободны от инфекции. Я бы также поместил в список восприимчивых рыб коровок, самцов и иглобрюхов. Как правило, все остальные находятся где-то посередине.

Жизненный цикл паразита интересен и важен для понимания при оценке лечения. Стадия, когда паразит прикрепляется к рыбе, называется трофонтом. Трофонт проводит от трех до семи дней (в зависимости от температуры), питаясь рыбой. После этого трофонт покидает рыбу и превращается в так называемого протомонта. Протомонт перемещается на субстрат и начинает ползать по нему, как правило, в течение двух-восьми часов, но может продолжаться и до восемнадцати часов после того, как покинет рыбу-хозяина. Как только протомонт прикрепляется к поверхности, он начинает цистировать и теперь называется томонтом. Вскоре после этого начинается деление внутри цисты на сотни дочерних паразитов, называемых томитами. Эта неинфекционная стадия может длиться от трех до двадцати восьми дней. В течение этого длительного периода циста паразита находится в ожидании хозяина. По истечении этого периода томиты вылупляются и начинают плавать в поисках рыбы-хозяина. В этот момент их называют теронтами, и они должны найти хозяина в течение двадцати четырех часов или погибнуть. Они предпочитают искать кожу и жаберную ткань, затем превращаются в трофонтов и начинают процесс заново (Colorni & Burgess, 1997).

Многие любители обманываются, полагая, что они вылечили своих рыб от паразитов, но через несколько недель снова обнаруживают Ich на рыбах; это причина, по которой так важно соблюдать полный протокол лечения. Не совершайте эту ошибку и не успокаивайте себя ложным чувством безопасности. Паразиты могут находиться на стадии, когда они просто перегруппировываются и размножаются для своего “следующего наступления”. В дикой природе такая массовая репродуктивная фаза гарантирует, что несколько особей найдут подходящего хозяина и продолжат цикл. Однако в тесных условиях наших аквариумов это означает сравнительно высокий уровень заражения.

Есть еще одно интересное наблюдение, которое я обнаружил в своих исследованиях биологии Cryptocaryon irritans. Зрелые трофонты покидают хозяина, а томиты выходят из теронта/цисты в темноте (Yoshinaga & Dickerson, 1994). Представьте себе рыбу, которая случайно приобретает одного паразита Ich. Через несколько дней, когда трофонт хорошо питается, он готовится сбросить своего хозяина, но ждет, когда наступит темнота. Тем временем рыба готовится “лечь спать” в своем любимом укрытии в аквариуме; одни и те же рыбы занимают одно и то же место практически каждую ночь. Теперь трофонт покидает рыбу, заселяет ее и начинает размножаться. Проходит несколько дней или недель, и та же рыба возвращается на то же место ночью, только на этот раз сотни заразных теронтов ищут хозяина/жертву в том же месте. Я уверен, что некоторые из вас думают, что это просто дьявольское зрелище. Другие могут оценить простую красоту этого плана. Для меня это просто еще одно напоминание о том, насколько удивительны эволюция и адаптация.

Учитывая все это “планирование”, мне показалось странным прочитать, что не все теронты смогут найти хозяина. На самом деле, в идеальных лабораторных условиях это удается лишь пяти-двадцати процентам, но это все равно составляет огромное количество паразитов. Учитывая такую скорость заражения и скорость размножения, общее количество паразитов может увеличиваться примерно в десять раз каждую неделю (Colorni & Burgess, 1997).

Что касается таксономии, Cryptocaryon в настоящее время остается монотипическим родом (то есть в этом роду существует только один вид). Хотя есть исследования, позволяющие предположить, что на самом деле может существовать несколько отдельных видов. По крайней мере, существуют различные изоляты из разных географических регионов, даже если их различия недостаточно существенны для выделения отдельных видов (Colorni & Burgess, 1997). Я и несколько моих друзей в этом бизнесе можем подтвердить, что при смешивании рыбы из Карибского бассейна с рыбой из Индо-Тихоокеанского региона количество вспышек и смертей Cryptocaryon irritans заметно возрастает. Не исключено, что такое увеличение числа проблем может быть результатом того, что рыба, выработавшая ограниченный иммунитет против своего родного вида, вступает в контакт с незнакомым штаммом паразита.

Лучший курс лечения – это профилактика. Всех новых рыб следует помещать в карантин, по крайней мере, на один полный месяц. Это поможет убедиться, что рыбы здоровы, а также даст им время пережить травму, полученную при транспортировке, привыкнуть к новому рациону и набрать вес после того, как они выдержат зачастую неполноценные корма у продавцов, оптовиков и на станциях сбора. Лучше всего, если это будет происходить в свободной от конкуренции среде.

Я обнаружил, что лучшие карантинные/больничные аквариумы имеют голое дно (без дробленых кораллов или песка) и украшены инертными, непористыми и “легко чистящимися и дезинфицирующимися” предметами. Для укрытия хорошо подходят короткие отрезки труб ПВХ различного диаметра. Живой камень не отвечает этим критериям, поэтому я не рекомендую его использовать. Лучше всего не использовать известковые материалы, поскольку они впитывают некоторые лекарства и мешают их применению.

Есть и еще одно возможное преимущество использования всех этих гладких, искусственных материалов в карантинном аквариуме. Изучая вспышки Cryptocaryon irritans у бурого пятнистого групера (Epinephelus tauvina) на станции аквакультуры, Рашид (1989) обнаружила, что рыбы, содержавшиеся в бетонных емкостях, регулярно становились жертвами Ich, в то время как рыбы, содержавшиеся на том же предприятии с идентичным уходом, но в емкостях из стекловолокна, абсолютно не страдали от заражения. Она предположила, что цистная стадия паразита считает гладкие бока стеклопластиковых емкостей негостеприимными. Хотя это и не доказано, но очень интересно, и это определенно следует иметь в виду. По крайней мере, такой тип установки очень легко чистить и дезинфицировать в случае необходимости.

Я предпочитаю фильтровать аквариум с помощью губчатых фильтров. Обычно один из них работает, но спрятан в поддоне моего выставочного аквариума. Таким образом, я могу держать карантинный аквариум пустым и убирать его в гараж, когда он не нужен. Некоторые люди могут быть обеспокоены тем, что губчатый фильтр действует как так называемая “фабрика нитратов”, но количество нитратов, производимых сравнительно небольшим губчатым фильтром, должно быть незначительным. Когда мне нужно использовать карантинный аквариум, я просто сливаю немного воды из аквариума-витрины в карантинный аквариум, добавляю губчатый фильтр и нагреватель (я обычно выбираю температуру 80° – 82°F, чтобы ускорить жизненный цикл любых паразитов), и все готово. Вы также можете включить в карантинный аквариум насадку для рыб, которым требуется резкое движение воды. Весь процесс установки займет менее часа и позволит сэкономить электроэнергию и место, которые необходимы для постоянного содержания карантинного аквариума. Кроме того, пустой карантинный аквариум избавляет от соблазна превратить его в полноценный рифовый или рыбный аквариум!

Если у вас нет отстойника в демонстрационном аквариуме, хорошо работает фильтр навесного типа, например, с “био-колесом”. Держите био-колесо работающим в демонстрационном аквариуме и перемещайте его в карантинный аквариум по мере необходимости. Единственная мера предосторожности – вынимать картридж фильтра с активированным углем при использовании любых лекарств.

Я настоятельно рекомендую никогда не добавлять никаких лекарств в демонстрационный аквариум. По моему опыту, всегда лучше удалить всех больных рыб в отдельный карантинный/больничный аквариум для лечения. Это гарантирует, что никто из других обитателей аквариума, таких как кораллы, бактерии, черви, амфиподы, копеподы или креветки-мизиды, не пострадает. Кроме того, если вы продержите рыбу в карантине в течение месяца без заражения, вы можете быть уверены, что все паразиты Ich и их яйца вылупились и погибли без хозяина. Обратите внимание, что Cryptocaryon irritans требует наличия рыбы-хозяина. Они не могут завершить свой жизненный цикл с камнем, песком или любыми беспозвоночными.

Некоторые люди проводят различие между карантинными и больничными аквариумами, причем больничные аквариумы устроены так, как я описал выше, а карантинные аквариумы гораздо больше похожи на экспозиции, в которых отсутствуют другие рыбы. Я не провожу такого различия и предпочитаю карантинировать всех своих рыб описанным выше способом. Теория заключается в том, что рыбы, содержащиеся в более естественной обстановке, будут испытывать меньший стресс, и поэтому с большей вероятностью будут сопротивляться болезням. В случае, если рыба заболеет, ее пересаживают в аквариум с голым дном для лечения. Хотя это может иметь некоторые преимущества, я не могу утруждать себя содержанием двух аквариумов только для временного содержания рыб.

Вариант лечения 1 – медь:

Медь является высокоэффективным препаратом против Cryptocaryon irritans, если ее дозировать и поддерживать в нужной концентрации. Ссылки, которые я нашел, различаются по рекомендуемой дозировке:

Andrews et al, 1988: 0.15-0. 30 мг/л Bassleer, 1996: 0,25-0,30 мг/л Gratzek et al, 1992: 0,115-0,18 мг/л Noga, 2000: 0,15-0,20 мг/л Untergasser, 1989: 0,15-0,20 мг/л * * * (рекомендуется использовать с метиленовым синим).

Я собираюсь сократить свой совет и просто предложить: “Всегда следуйте указаниям производителя любой марки медного препарата, который вы используете, и всегда используйте тест-набор для проверки дозировок”. Медь имеет узкий диапазон эффективности, и ее уровень необходимо контролировать, по крайней мере, ежедневно.

У меди есть несколько недостатков при лечении ич. Во-первых, при слишком низкой дозировке она неэффективна. Во-вторых, при слишком высокой дозировке она может убить всех ваших рыб. Для поддержания необходимого и постоянного уровня меди требуется ежедневное, а лучше дважды в день, тестирование. Даже если уровень меди находится в пределах нормы, некоторые рыбы не переносят ее. К рыбам, более чувствительным к меди, относятся рыбы-львы, иглобрюхи, мандаринки, бленни и любые другие бесчешуйчатые рыбы. Медь также является известным иммунодепрессантом, делая рыб более восприимчивыми к вторичным инфекциям. Беспозвоночные чрезвычайно чувствительны к меди, и их нельзя содержать в аквариуме, где проводится такая обработка. Наконец, медь нельзя использовать в присутствии любой известковой среды. Живые камни, песок, измельченные кораллы и мертвые коралловые скелеты будут адсорбировать медь, делая ее бесполезным средством.

Медь специально направлена на инфекционную, свободно плавающую переднюю стадию этого заболевания, поскольку нахождение глубоко в коже хозяина защищает трофонтов; стенки цист томонтов также непроницаемы (Colorni & Burgess, 1997). Зная это и жизненный цикл Cryptocaryon irritans, наиболее эффективным методом будет мониторинг и дозирование по мере необходимости вечером, прямо перед выключением света. Это обеспечит оптимальную концентрацию препарата в наиболее благоприятное время.

Медь, вероятно, является самым популярным методом лечения Cryptocaryon irritans, но не является моим первым выбором. Он слишком трудоемок, чтобы я мог рекомендовать его широкой публике, имеет большой риск передозировки, снижает устойчивость рыб к другим заболеваниям и может нанести серьезный ущерб почкам, печени и полезной кишечной флоре лечащихся рыб. Повреждение кишечной флоры – это то, на что многие любители указывают как на возможную причину эрозии головы и боковых линий (HLLE), хотя в настоящее время нет точной причины HLLE.

Вариант лечения 2 – Формалин:

Формалин может применяться одним из двух способов: либо в виде коротких погружений в соленую воду, либо постоянно использоваться в больничном аквариуме. Дозировка для постоянного применения составляет 1 мл 37%-ного раствора на каждые 25 галлонов воды карантинного аквариума (Bassleer, 1996). Я предпочитаю погружение в формалин постоянному использованию, поскольку формалин является довольно токсичным соединением. Кроме того, при отсутствии имеющихся в продаже тест-наборов для контроля концентрации, было бы сложно дозировать весь аквариум и учитывать испарение, поглощение и т.д.

Для приготовления препарата я беру 5 галлонов аквариумной воды и добавляю в нее 3,75 мл 37%-ного формалина. Я также интенсивно аэрирую воду, чтобы обеспечить максимальное количество растворенного кислорода. Окунание должно длиться от 30 до 60 минут. Как и при использовании любого лекарства, лучше всего следить за реакцией рыбы и быть готовым действовать, если она окажется в бедственном положении. По окончании погружения рыбу выловите сачком, поместите обратно в больничный аквариум и выбросьте воду для погружения. Этот протокол следует повторять каждые два дня в течение двух недель.

Я хотел бы напомнить читателям о нескольких мерах предосторожности, связанных с использованием формалина. Во-первых, он является канцерогеном. Формалин представляет собой водный раствор канцерогенного газа формальдегида, поэтому при его использовании следует надевать перчатки и хорошо проветривать помещение. Во-вторых, формалин не следует использовать, если у рыбы есть открытые язвы, раны или повреждения. Он может вызвать повреждение тканей в этих открытых ранах. И, наконец, формалин может лишить воду растворенного кислорода. Вот почему правильная аэрация так важна. По этой причине не используйте формалин, если температура воды составляет 82*F или выше (Noga, 2000 и Michael, 2002).

Вариант лечения 3 – медь и формалин:

Возможно, а иногда и предпочтительно, как в случае сильного заражения Cryptocaryon irritans и Amyloodinium sp., использовать медь в сочетании с формалином в карантинном/больничном аквариуме. Те же предупреждения о чувствительных рыбах остаются в силе. Если рыба чувствительна либо к меди, либо к формалину, ее нельзя подвергать безопасному воздействию комбинированного протокола. На данном этапе стоит вопрос “вылечить или убить”. Вы либо вылечите свою рыбу, либо убьете ее от отравления. Это самый агрессивный и опасный метод лечения, описанный в данной статье.

Вариант лечения 4 – Гипосоленость:

Низкая соленость была продемонстрирована как эффективное средство против Cryptocaryon irritans (Noga, 2000). Уровень солености 16 ppt или приблизительно 1,009-1,010 удельного веса при температуре 78-80*F в течение 14 дней, как сообщается, убивает паразита. Я никогда не сталкивался с проблемами при помещении рыбы в условия гипосолености, но регулярно наблюдал, как рыба проявляла явные признаки дистресса, когда ее слишком быстро возвращали к нормальному уровню солености. По этой причине я стараюсь ограничивать увеличение удельного веса 0,001-0,002 пункта в день.

Одним из предполагаемых преимуществ такого лечения является экономия энергии для пострадавших рыб. Рифовые рыбы вынуждены постоянно пить соленую воду и выводить соль для поддержания правильного осмотического баланса. Понижение солености окружающей среды облегчает эту энергетическую нагрузку на больную рыбу, тем самым позволяя ей тратить больше энергии на борьбу с инфекцией (Kollman, 1998 и Bartelme, 2001). Напротив, содержание рыбы в условиях низкой солености означает, что она недостаточно “промывает” свои почки. После длительного воздействия это может привести к почечной недостаточности и гибели рыбы (Шимек, перс. комм.).

Недостатки этого метода лечения такие же, как и у многих других вариантов лечения, рассмотренных выше. Беспозвоночные и некоторые рыбы не смогут его перенести, поэтому не следует применять гипосолинизацию в выставочном аквариуме. Акулы и скаты – две группы рыб, которые не переносят эту процедуру. Я бы также не рекомендовал применять этот метод в присутствии живого камня или живого песка. Гипосолевая обработка, скорее всего, убьет червей, ракообразных, моллюсков и других живых существ в субстрате и на нем, что приведет к сильному снижению общего качества воды.

У меня есть еще одно слово предостережения при использовании этого средства. Я бы настоятельно рекомендовал использовать рефрактометр или, возможно, прибор для измерения солености. Гидрометры с поворотным рычагом, как известно, неточны. Стеклянные, плавающие гидрометры лучше, но их легко разбить. Точное измерение солености может означать разницу между эффективным диапазоном лечения, слишком высоким уровнем и неэффективностью или слишком низким и угрозой для ваших рыб.

Даже учитывая некоторые недостатки, гипосоленость является отличным методом лечения зараженных рыб от иха в надлежащем больничном аквариуме. По моему мнению, из всех вариантов лечения, рассмотренных до сих пор, он является самым безопасным. Хотя ни один из этих вариантов не подходит для использования в выставочном аквариуме, и все они имеют свои недостатки, взвешивание плюсов и минусов каждого из них приводит к тому, что я рекомендую гипосолинити выше остальных.

Вариант лечения 5 – ежедневная подмена воды:

Джон Уолш рассказал об этом методе в презентации, сделанной для Питтсбургского общества морских аквариумов, Inc. Он безопасен и эффективен для всех морских рыб (Colorni, 1985) и является моим предпочтительным первым способом лечения. Рыб отсаживают в карантинный/больничный аквариум, а затем в течение двух недель ежедневно проводят полную очистку аквариума и подмену 50% воды. Хотя размер такой подмены воды может обеспокоить некоторых аквариумистов, не привыкших к подменам воды такого масштаба, при условии, что вы тщательно следите за соответствием температуры и солености, у вас не должно возникнуть никаких проблем. Этот метод помогает удалить томитов, томонтов и теронтов из аквариума и снижает вероятность повторного заражения. Рыбы должны оставаться в карантине еще в течение месяца, чтобы убедиться в эффективности лечения и дать им время набраться сил.

Этот метод лучше всего использовать в качестве профилактического средства при первом приобретении рыбы. Он также полезен при слабом заражении или когда другие, более агрессивные методы лечения не могут быть использованы из-за чувствительности вида. Самое лучшее в этом методе лечения то, что он безопасен для всех рыб и беспозвоночных. Еще одно преимущество – ежедневная подмена воды поможет вам поддерживать оптимальное качество воды и, следовательно, стимулировать иммунную систему рыбы для борьбы с любыми вторичными бактериальными инфекциями, которые могут атаковать уязвимые места, где паразиты Cryptocaryon irritans зарылись в кожу. В отличие от меди или формалина, которые оба являются иммуносупрессивными и могут фактически способствовать развитию вторичной инфекции.

Разновидности этого метода (и вероятный источник первоначальной идеи лечения) были предложены и успешно использованы Колорни (Colorni, 1987 и Colorni & Burgess, 1997). Они включают в себя перемещение зараженных рыб между двумя аквариумами с очисткой и сушкой аквариумов в промежутках между их использованием или удаление песчаного субстрата и замену его новым песком каждые три дня. Мне не нравится идея так много возиться с больной рыбой, используя метод переноса аквариума. Хотя рыболовная сетка разработана для того, чтобы быть мягкой и эластичной, она все равно может быть перетянута через глаз рыбы. Я обнаружил, что чем больше приходится манипулировать рыбой, тем больше вероятность заражения вторичной бактериальной инфекцией, такой как “pop-eye” или “cloudy eyes”. Интересен метод удаления субстрата. Предполагается, что песок является идеальной средой для привлечения паразитов. Если удалять песок каждые три дня, то вместе с ним удаляются и мокрицы. Использование арагонитового песка для этой цели дорого (если только вы не живете где-нибудь, где песок Саутдауна легко доступен) и очень грязно. Кремнеземный песок широко доступен, дешев и создает немного менее мутную воду, но он все равно не так чист и прост, как метод подмены воды. Я обнаружил, что протокол подмены воды столь же эффективен и значительно более практичен, чем любой из методов Колорни.

Надеюсь, я предоставил информацию о некоторых биологических особенностях этого паразита и четкие инструкции по наиболее распространенным методам лечения. Во второй части этой серии я надеюсь обсудить некоторые из более новых и/или экспериментальных методов лечения, которые были предложены или недавно появились на аквариумном рынке. Пожалуйста, не забывайте о жизненном цикле и принятых методах лечения этого заболевания в контексте обсуждения второй группы методов лечения во второй части этой серии. Во многих случаях трудно отделить якобы наблюдаемое “лечение” от простых вариаций естественного иммунитета человека.

Я хотел бы поблагодарить Эрика Борнемана, Адама Чесналеса, moonpod и доктора Рона Шимека за их редакторскую работу и идеи. Их предложения были весьма полезны при подготовке этой серии из двух частей.

Эндрюс, доктор Крис, Адриан Экселл и доктор Невилл Каррингтон. 1988. Руководство по здоровью рыб. Blacksburg, VA: Tetra Press. стр. 166-168 и 190-195.

Бартелме, Терри Д. 2001. “Лечение соленоводного лишая без лекарств”, Tropical Fish Hobbyist, январь 2001.

Басслир, Джеральд. 1996. Diseases in Marine Aquarium Fish: Причины, симптомы, лечение. Вестмеербек, Бельгия: Bassleer Biofish. стр. 51-52.

Bunkley-Williams, Lucy & Ernest H. Williams, Jr. 1994. “Болезнь, вызванная Trichodina spheroidesi и Cryptocaryon irritans (Ciliophora) у диких рыб коралловых рифов” Journal of Aquatic Animal Health 6:360-361, 1994.

Burgess, P. J. & R. A. Matthews. 1995. “Диапазон рыбных хозяев семи изолятов Cryptocaryon irritans (Ciliophora)” Журнал биологии рыб 46:727-729, 1995.

Calfo, Anthony pers. comm.

Colorni, Angelo. 1985 “Аспекты биологии Cryptocaryon irritans, и гипосаливация как мера борьбы с культивируемым златоглавым морским лещом Sparus aurata” Болезни водных организмов, 1:19-22, 1985.

Колорни, Анджело. 1987. “Биология Cryptocaryon irritans и стратегии борьбы с ним” Аквакультура 67:236-237.

Колорни, Анджело и Питер Берджесс. 1997. ” Cryptocaryon irritans Brown 1951, причина “болезни белого пятна” у морских рыб: обновление” Aquarium Sciences and Conservation 1:217-238, 1997.

Диксон, доктор Беверли А. перс. комм.

Феннер, Роберт, перс. комм.

В Checkers Specials есть мясо, бакалея и другие обычные продукты.

Гратцек, д-р Джон Б., д-р Ричард Е. Вольке, д-р Эммет Б. Шоттс младший, д-р Дональд Доу и Джордж К. Блазиола. 1992. Aquariology: Болезни рыб и химия воды. Блэксбург, штат Вирджиния: Тетра Пресс. стр. 105-107.

Джоши, Санджай. 2003. “Топ-5 паразитов морских рыб” Журнал Aquarium Fish, сентябрь 2003.

Колман, Рэнд. 1998. “Низкая соленость как карантин и лечение паразитов морских рыб” SeaScope, том 15, весна 1998.

Майкл, Скотт. 2002. “Борьба с морскими паразитами” Журнал “Аквариумные рыбы”, октябрь 2002.

Нога, Эдвард Дж. 2000. Болезни рыб: Диагностика и лечение. Эймс, штат Айова: Издательство университета штата Айова. стр. 97-99, 282-283 и 286-288.

Рашид, Виктория М. 1989 “Болезнь культивируемых коричнево-пятнистого групера Epinephelus tauvina и серебристо-черной порги Acanthopagrus curvieri в Кувейте” Журнал здоровья водных животных 1:102-107, 1989.

Унтергассер, Дитер. 1989. Справочник по болезням рыб. Нептун, Нью-Джерси: TFH Publications. стр. 95 и 127.

Уолш, Джон, перс.комм.

Yoshinaga, T. & H.W. Dickerson. 1994. “Laboratory Propagation of Cryptocaryon irritans on a Saltwater-Adapted Poecilia Hybrid, the Black Molly” Journal of Aquatic Animal Health 6:197-201, 1994.

Бартелме, Терри Д. 1999. Формальдегид: друг или враг? SeaScope, том 16, лето 1999.

Дикерсон, доктор Гарри В. 1994. “Лечение Cryptocaryon irritans в аквариумах” SeaScope, том 11, лето 1994.

Феннер, Роберт. 1998. Сознательный морской аквариумист. Шелбурн, VT: Microcosm Ltd.

Феннер, Роберт. 2003. “Очистительный симбиоз среди морских рыб”, Tropical Fish Hobbyist, февраль 2003.

Moe, Martin A. Jr. 1989. The Marine Aquarium Reference: Системы и беспозвоночные. Плантация, Флорида: Green Turtle Publications.

Сигел, Терри. 2002. Cryptocaryon : An Old Enemy Marine Fish & Reef 2002 Annual.

Source: reefkeeping.com